Filogenia bacteriana

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La filogenia de las bacterias se desarrolla en la actualidad a partir de la elaboración de árboles filogenéticos moleculares, especialmente basados en el ARN ribosomal, pero también sobre la base de proteínas (proteoma) y genes (genoma).

Una de las principales características de la filogenia bacteriana, es que está marcadamente influenciada por la transferencia genética horizontal.

Históricamente se clasificaba a las bacterias desde su descubrimiento según su morfología. Posteriormente, ya en el siglo XX se incluyó los aspectos bioquímicos y metabólicos. Para los años 1900, ya se disponía de catálogos nucleotídicos de ARNr 16S para más de 450 bacterias,[1]​ por lo que la actual taxonomía bacteriana está muy influenciada por los estudios del ARNr.

A pesar de que existe una amplia base de datos sobre la filogenia molecular procariota, los resultados se integran al árbol de la vida solo parcialmente y se habla incluso del fracaso de tales esfuerzos.[2][3]​ El principal factor que dificulta conocer la evolución y filogenia bacteriana es la transferencia genética horizontal, por lo que un árbol filogenético determinado dependerá del gen o genes escogidos, produciéndose resultados muy diversos, contradictorios y difíciles de interpretar. Otro factor que puede incurrir es la atracción de ramas largas, un artefacto filogenético que coloca erróneamente a los linajes de rápida evolución en posición basal o con otros linajes de rápida evolución altamente divergentes. Aun así, algunos autores han ensayado teorías evolutivas que intentan explicar la naturaleza del ancestro común bacteriano y su evolución en grandes grupos filogenéticos.

Principales grupos[editar]

Árboles genómicos como éste de 2016, muestran la cercana relación entre filos termófilos. En la imagen: Thermotogae, Aquificae y Deinococcus-Thermus.

Termófilos[editar]

Las bacterias termófilas e hipertermófilas suelen tener algunas características comunes como la respiración anaerobia, la reducción de sulfatos o sulfuros y la mayoría son bacterias Gram negativas por su doble membrana. Pueden tener un metabolismo quimiolitoautótrofo al igual que muchas arqueas o ser quimioorganótrofos. Comúnmente se desarrollan bien entre los 60 y 90 °C.

Los árboles filogenéticos basados en el genoma,[4]​ y en el proteoma[5]​ muestran una clara relación entre Aquificota y Thermotogota, la cual suele extenderse a Dictyoglomota. Sin embargo el análisis ARNr 23S y 16S muestran a los termófilos como un grupo parafilético en posición basal que incluye a Thermodesulfobacteriota.[6]​ También se ha propuesto que la condición termófila bacteriana tendría una relación con la transferencia genética horizontal con arqueas.[7]

Análisis sobre 56 genes extienden esta relación a Deinococcota[8]​ y análisis genómicos más actualizados agrupan a los termófilos con otros grupos recientemente descubiertos que no son necesariamente termófilos. Así pues, Aquificota se relacionaría con Chrysiogenota, Deferribacterota y Thermodesulfobacteriota; mientras que Thermotogae se aproxima más a Dictyoglomota, Caldisericota y Synergistota.[9]​ Por otro lado, análisis del proteoma agrupa a los termófilos con Nitrospirae.[5]

Otros filos que son predominantemente mesófilos poseen subgrupos termófilos, como es el caso de Bacillota, Actinomycetota, Chloroflexota y Bacteroidota.

Gram positivos[editar]

Posición de las bacterias Gram positivas según el árbol de ARNr 16S de C. Woese 1990.

Las bacterias Gram positivas o Posibacteria, están conformadas por los filos: Bacillota (GC bajo) y Actinomycetota (GC alto). Otro filo relacionado es Chloroflexota, por su proximidad filogenética y su estructura monérmica, aunque su tinción Gram es variable. Se considera que el filo Tenericutes (micoplasmas) son derivados de Bacillota según la gran mayoría de árboles filogenéticos, pero su tinción no es Gram positiva debido a la carencia de pared celular.

Los Gram positivos tienen características comunes, especialmente en la envoltura celular, la cual está conformada por una sola membrana a diferencia de las dos membranas que poseen las bacterias Gram negativas. Están revestidas externamente por una gruesa pared de peptidoglicano. Son bacterias anaerobias o aerobias cuyo hábitat es principalmente continental, encontrándose tanto en el suelo como en agua dulce y muchas veces colonizando animales y plantas como comensales o como invasores patógenos. Suelen desarrollar esporas, ya que algunos producen endosporas y algunas actinobacterias producen exosporas.

La posición de Bacillota y Actinomycetota en los árboles filogenéticos, muestra que su relación no es determinante. Forman un grupo monofilético en algunos árboles proteicos, como en el basado en la proteína EF-1α-Tu y en las proteínas de choque térmico Hsp70 y Hsp60.[10]​ En otros árboles proteicos la relación evolutiva es próxima, en donde Bacillota aparece primero, dando origen a Actinomycetota posteriormente.[5]​ Por el contrario, en algunos árboles de ARNr 16S, es Actinomycetota quien aparece como un grupo anterior al clado Bacillota.[11][12]​ Por otro lado hay árboles genómicos que los muestran como grupos separados, pero de algún modo relacionados dentro de un clado mayor denominado Terrabacteria, por lo que sus características comunes como la gruesa pared y la formación de esporas, podrían ser producto de la adaptación al hábitat terrestre.[8]

Fotosintéticos[editar]

AnimaliaFungiFirmicutesChlamydiaeChlorobiBacteroidetesActinobacteriaPlanctomycetesSpirochaetesFusobacteriaAquificaeThermotogaeCyanobacteriaChloroflexiDeinococcus-ThermusAcidobacteriaProteobacteriaEuryarchaeotaNanoarchaeotaCrenarchaeotaProtozooRhodophytaViridiplantaeMyxomycota
En los árboles filogenéticos del genoma y del proteoma, Cyanobacteriota y Chloroflexota presentan proximidad.

Los grupos fotosintéticos presentan algunas características comunes como la tinción Gram negativa, la presencia de un pigmento verde fotosintético tipo porfirina para el metabolismo fotolitoautótrofo y presencia de otros pigmentos como los carotenoides. Se diferencian principalmente en el tipo de fotosíntesis, que en Cyanobacteriota por ejemplo es oxigénica (con producción de oxígeno) por acción de la clorofila, mientras que la de Chloroflexota y Chlorobia es anoxigénica por acción de la bacterioclorofila.

Se ha encontrado que Cyanobacteriota y Chloroflexota tienen unidad monofilética en varios árboles genómicos[8]​ y proteicos. En otros estudios genómicos y proteicos también se encuentran relacionados entre sí, pero se incluyen en un clado conjuntamente con Deinococcota.[5]​ Por el contrario, en los árboles de ARNr 16S y 23S no se ha presentado ninguna relación cercana entre estos dos grupos.

Es posible que la bacterioclorofila apareciera primero, el pasado arcaico de una atmósfera sin oxígeno parece corresponder con la fotosíntesis anoxigénica. El estudio filogenético de los diversos pigmentos concluye por consenso que la bacterioclorofila precedió a la clorofila,[13]​ además la molécula de la bacterioclorofila es más simple y a la vez más diversa. El análisis de secuencias de nucleótidos que codifican las enzimas biosintéticas de la clorofila y la bacterioclorofila refuerzan este punto.[14]

Otros grupos fotótrofos como las bacterias verdes sulfurosas, bacterias púrpuras, heliobacterias y otras, poseen bacterioclorofila, pero no están relacionados filogenéticamente con Cyanobacteriota ni con Chloroflexota, por lo que probablemente adquirieron su condición fotótrofa en forma secundaria mediante transferencia genética horizontal.[15][16]

En general podemos notar de acuerdo a los análisis filogenéticos, que los grupos fotosintéticos no serían los más antiguos, ya que ellos aparecen más bien como subgrupos derivados de ancestros heterótrofos: Cyanobacteriota se derivaría del clado Cyanobacteria-Melainabacteria, Chloroflexia se derivaría de otros Chloroflexota, Chlorobia de Bacteroidota, las bacterias púrpuras de otras proteobacterias, las heliobacterias de Bacillota, etc.

Gracilicutes[editar]

Árbol de Gracilicutes según el modelo evolutivo de Cavalier-Smith.[17]

Gracilicutes o Hydrobacteria, es un extenso grupo de bacterias Gram negativas, y como tales contienen doble membrana celular: Su metabolismo es quimioorganoheterótrofo en la mayoría, pues muchos dependen de materia orgánica para su subsistencia; su respiración es anaerobia o aerobia, suelen presentar flagelos, y es común la relación con animales y plantas como comensales o patógenos. Es un supergrupo constituido a su vez por cuatro grupos principales:

  • Spirochaetota: De morfología particular, pues las espiroquetas son bien alargadas y helicoidales, con una envoltura importante llamada vaina externa, posee endoflagelos situados en el periplasma, los cuales son flagelos internos también llamados filamentos axiales.
  • Grupo FCB o Sphingobacteria: Conformado por los filos Fibrobacterota, Calditrichota y Bacteroidota, aunque podría sumarse otros grupos recién descubiertos como Gemmatimonadota. Se caracterizan por poseer esfingolípidos y por tener inmovilidad ya que mayormente carecen de flagelos, o pueden tener alta movilidad por deslizamiento.
  • Grupo PVC o Planctobacteria: Agrupa a Planctomycetota, Verrucomicrobiota y Chlamydiota, caracterizándose por tener una pared celular de peptidoglicano muy disminuida, ausente o sustituida por glicopéptidos. Son flagelados y suelen tener un ciclo de vida bifásico.
  • Pseudomonadota: Es el grupo con la mayor variabilidad morfológica y metabólica, la mayoría son heterótrofos pero también hay fotosintéticos (bacterias púrpuras) y quimiosintéticos (nitrificantes), pueden ser aerobios o anaerobios, con flagelos o inmóviles, de vida libre o patógenos, algunos endosimbióticos (ricketsias) y otros forman agregados multicelulares (mixobacterias). Los subgrupos filogenéticos usan las letras griegas α, β, γ, δ, ε y ζ, a las que se suele añadir Acidobacteriota como grupo relacionado y en ocasiones a Aquificota,[18][19]​ además de Deferribacterota y Elusimicrobiota según algunos árboles proteicos.[20]

Gracilicutes está respaldado por la concatenación de los árboles de ARNr 16S y 23,[21][22]​ así como en varios estudios proteicos. Igualmente hay respaldo en un estudio genómico donde se analiza la inserción y eliminación de secuencias proteicas, relacionando además a Aquificae con Pseudomonadota.[23]​ Otro estudio genómico apoya ampliamente este clado, pero contradiciendo otros estudios ubica a Aquificota junto Thermotogota y fuera de Gracilicutes, ya que se encontró evidencia de una gran transferencia genética horizontal entre los aquificales y épsilon-Proteobacteria.[24][25]​ Un extenso análisis del ARNr 16S respalda este clado e incluye a Fusobacteria y a pequeños filos recién descubiertos como Chrysiogenota y Armatimonadota.[26]

Evolutivamente, Gracilicutes se habría originado a partir de una bacteria Gram negativa flagelada poseedora de lipopolisacáridos (endotoxinas) en sus membranas, la cual sufrió cuatro inserciones proteicas: un amino-acil en Hsp60 y en FtsZ, y un dominio en alfa y en beta ARNP.[17]

Modelo de los ancestros termófilos[editar]

Es probable que la primera bacteria haya heredado características hipertermófilas, quimiótrofas y anaerobias del último ancestro universal, pues esto es compatible con las hipótesis más aceptadas sobre el origen de la vida: la del "caldo primigenio" y la teoría del mundo de hierro-azufre.

Los árboles filogenéticos basados en el ARNr 16S[27][28]​ y 23S,[29][30]​ muestran a las bacterias termófilas en posición basal; al igual que en algunos árboles proteicos[31][32]​ y enzimáticos.[33]​ En la gran mayoría de estos casos, el filo Aquificota es la rama bacteriana más antigua y divergente, un filo cuyo metabolismo quimiosintético recuerda a muchas arqueas. En cuanto a los árboles genómicos, en su mayoría dan otros resultados y no avalan estas conclusiones.

Análisis del ARN ribosomal[editar]

La concatenación de los árboles filogenéticos de ARNr 16S y 23S[34]​ ha dado el siguiente resultado:

 Bacteria 

 Aquificota

 

 Thermotogota

 

 Dictyoglomota

 

 Deinococcota

 

 Chloroflexota

 

 Actinomycetota

 

 Cyanobacteriota

 

 Bacillota

 

 Fusobacteriota

 Spirochaetota

FCB

 PVC 

Planctomycetota

Chlamydiota/Verrucomicrobiota

Pseudomonadota

Otros análisis en base ARNr 16S y de 23S, coinciden en dar como grupos basales a Aquificota (un grupo hipertermófilo quimiosintético) y Thermotogota (termófilo quimioheterótrofo).[35]

Un extenso análisis basado en el ARNr 16S (proyecto The All-Species Living Tree),[36]​ con una actualización en la filogenia profunda (2018),[37]​ da el siguiente resultado (los grupos parafiléticos van entre comillas):

Prokaryota

 Archaea

Bacteria

 Coprothermobacterota

 Thermotogota

 Thermodesulfobiaceae

 Synergistota

 Caldisericota

 Aquificota

 Thermodesulfobacteriota

"Bacillota" (incluye Cyanobacteriota, Tenericutes y Dictyoglomota)

 

 Actinomycetota

 Chloroflexota (inc. Thermomicrobia)

 Nitrospirota

 Deinococcota

Gracilicutes

 Bacteroidota

 Marinisomatota

 Calditrichota

 Fibrobacterota

 Gemmatimonadota

PVC

Planctomycetota

Chlamydiota

 Lentisphaerae

 Verrucomicrobia

"Deltaproteobacteria"

 Epsilonproteobacteria

Acidobacteriota

 Deferribacterota

 Chrysiogenota

Spirochaetota

Fusobacteriota

 Elusimicrobiota

 Armatimonadota

 Zetaproteobacteria

 Alphaproteobacteria

"Gammaproteobacteria"

 Betaproteobacteria

Este árbol da como resultado al menos 5 grupos termófilos-quimiótrofos-anaerobios bacterianos en posición basal. Si a esto sumamos que la mayoría de filos de las arqueas son igualmente termófilos-quimiótrofos-anaerobios, podemos apreciar que la filogenia procariota nos ha dado así, una idea de las características de la vida durante los albores de la historia de la Tierra. Adicionalmente se observa que los filos basales Coprothermobacterota y Thermotogota se consideran monodérmicos, con una sola membrana lipídica como las arqueas.

Más ancestros termófilos encontramos al observar la filogenia de otros filos según este mismo proyecto del ARNr 16S. Los subgrupos basales termófilos son: Thermaerobacter, Thermoanaerobacteraceae, Dictyoglomota y Sulfobacillus (subclados de Bacillota), Rubrobacteridae (Actinomycetota) y Rhodothermaceae (Bacteroidetes). También son termófilos algunos subgrupos de Chloroflexi, Deinococcota, Nitrospirota, Chlorobia, Deferribacterota, Acidobacteriota, Calditrichota y algunas especies de las protebacterias delta y beta.

Análisis proteicos[editar]

cladograma de Battistuzzi & Hedges 2009, mostrando grupos termófilos tempranos y dos superclados bacterianos: Terrabacteria e Hydrobacteria (Gracilicutes).

Algunos estudios filogenéticos proteicos coinciden en que los grupos termófilos son los más divergentes. Además muestran que entre las demás bacterias (las no termófilas) hay dos grandes supergrupos, uno adaptado al hábitat terrestre denominado Terrabacteria y otro adaptado al hábitat marino llamado Hydrobacteria (bacteria de agua) o Gracilicutes (de piel grácil por su delgada pared). Terrabacteria muestra varias características relacionadas con la adaptación al hábitat terrestre, como la resistencia a la desecación, la formación de esporas y la aparición de pigmentos que proveen protección de la radiación solar, lo que pudo ocurrir desde hace unos 3.000 millones de años.[38]

Terrabacteria se descubrió sobre la base de un estudio sobre 32 proteínas en 72 especies que mostró que había un superclado que agrupaba a Bacillota, Actinomycetota, Cyanobacteriota, Deinococcota y Fusobacteriota (Battistuzzi 2004).[39]​ Estudios proteicos posteriores con similares resultados, relacionan a Cyanobacteriota con Chloroflexota, y estos a su vez con los grupos Gram positivos.[20]​ Estos resultados han llevado a conclusiones evolutivas: las bacterias Gram positivas se habrían originado a través de la adaptación al hábitat terrestre, con una gruesa pared que las protege de la desecación y que ha contribuido a la patogenicidad en muchas especies.[40]​ Por lo general, los árboles evolutivos procariotas se basan en filos y clases, considerando que las relaciones entre estos grupos son producto de la transferencia horizontal de genes, sesgos en el cambio de secuencias y a grandes distancias evolutivas; pero rara vez se apoyan en la ecología y la biología celular.[40]​ El siguiente "anillo de la vida", es en realidad un árbol ecológico simplificado que combina los resultados obtenidos por estos y otros autores, basándose en la evidencia filogenética, citológica y medioambiental:

Análisis genómicos[editar]

Algunos análisis genómicos también colocan a los grupos hipertermófilos en posición basal. En forma resumida se muestra el siguiente cladograma:[41]

 Deinococcota

 Thermotogota

 Synergistota

Selabacteria

supergrupo Terrabacteria

supergrupo Gracilicutes o Hydrobacteria

El clado Selabacteria antecede a la aparición de los primeros grupos fotótrofos hace más de 3000 millones de años.[42]

Otros modelos evolutivos[editar]

Análisis de proteínas ribosómicas y el descubrimiento de las bacterias ultrapequeñas[editar]

El supergrupo CPR (Candidate Phyla Radiation) de las bacterias ultrapequeñas o nanobacterias, descubierto en 1998 y descrito recientemente en 2015, es un nuevo tipo de vida enigmático que se encontraría en la base de la filogenia bacteriana de acuerdo con nuevos métodos de análisis que estudian las proteínas ribosómicas. Las bacterias CPR son generalmente simbiontes de pequeño genoma con capacidades metabólicas que van de algo limitadas a muy restringidas, sin ciclo del ácido cítrico ni cadenas respiratorias y con limitada o ninguna capacidad para sintetizar nucleótidos y aminoácidos. El análisis genómico basado en proteínas ribosómicas ha dado la siguiente filogenia:[43]

 
 CPR 

Wirthbacteria

Microgenomatia

Parcubacteria

Cyanobacteria / Melainabacteria

Posibacteria

Bacillota (inc. Tenericutes, Armatimonadota)

Actinomycetota

Chloroflexota

DST

Fusobacteria / Synergistota

termófilos

Deinococcota

Aquificota / Calescibacterota

Caldisericota / Dictyoglomota

Atribacteriota

Gracilicutes

Poribacteria

FCB

Elusimicrobiota

PVC

Acidobacteriota y relacionados

Thermodesulfobacteriota y relacionados

Chrysiogenota / Deferribacterota

Hydrogenedentota / Spirochaetota

Pseudomonadota

Si se compara el análisis fitogenético de las proteínas ribosómicas con otros estudios moleculares (ARNr, proteínas, genes), así como con teorías evolutivas, se obtiene los siguientes resultados aproximados:

Este modelo se denomina anillo de la vida, debido a que es un cladograma cerrado para graficar el origen eucariota a partir de una arquea del clado Asgard y una Alphaproteobacteria. En él se destacan:

Temprana divergencia en supergrupos[editar]

Un estudio genómico que compara múltiples árboles proteicos y genes homólogos (2001), descubre tres potenciales clados bacterianos del más alto nivel filogenético:[44]

Estos tres grupos coinciden con los supergrupos Gracilicutes, Terrabacteria y el de los hipertermófilos respectivamente.

También es posible que en Bacteria se produjo una temprana divergencia en dos grandes superclados: Esta hipótesis está respaldada por el análisis filogenético de un grupo representativo de proteínas.[45]​ El resultado del análisis de 56 genes bacterianos respaldan este resultado, llamando a estos clados Terrabacteria y Gracilicutes,[46]​ obtiendo las siguientes relaciones (2015):[47]

Bacteria 
Terrabacteria

Aquificota

Thermotogota

Deinococcota

Cyanobacteriota

Chloroflexota

Actinomycetota

Bacillota

Fusobacteriota

 Gracilicutes 

Spirochaetota

FCB

 PVC

Planctomycetota

Chlamydiota

Verrucomicrobiota

Pseudomonadota

Un análisis genómico (2020) usando genes como caracteres y teniendo en cuenta la transferencia horizontal y la tasa de mutación también apoya este modelo incluyendo a las bacterias ultrapequeñas (CPR) en Terrabacteria, mientras que el filo Fusobacteriota puede pertenecer alternativamente a Terrabacteria, Gracilicutes o incluso puede ser el filo más basal de todas las bacterias. Se ha obtenido aproximadamente el siguiente resultado.[48]

Bacteria 
Terrabacteria

DST (Deinococcota, Synergistota, Thermotogota y relacionados)

Cyanobacteriota

Margulisbacteria

Bacillota

Actinobacteriota

Armatimonadota

Eremiobacteraeota

CPR

Dormibacteraeota

Chloroflexota

Gracilicutes

Fusobacteriota (?)

Spirochaetota

Elusimicrobiota

FCB (Fibrobacterota, Cloacimonadota, Bacteroidota y relacionados)

PVC (Planctomycetota, Verrucomicrobiota, Chlamydiota y relacionados)

Dependentiae

Aquificota

Deferribacterota

Acidobacteriota

Pseudomonadota

Nitrospirota

Con respecto a esta bifurcación una filogenia algo consensuada en el GTDB database y el Annotree es la siguiente:[49][50]

 Bacteria 
Gracilicutes

Fusobacteriota ?

Spirochaetota

Pseudomonadota

Planctobacteria o PVC

Sphingobacteria o FCB

Terrabacteria

Thermobacteria o DST

Cyanobacteriota

Margulisbacteria

Bacillota

Actinomycetota

Armatimonadota

Eremiobacteraeota

Patescibacteria o CPR

Dormibacteraeota

Chloroflexota

El ancestro monodérmico y grampositivo[editar]

Según R. Gupta, es posible que el último ancestro universal fuese una bacteria Gram positiva debido a su estructura simple y monodérmica, que al igual que las arqueas presentan una sola membrana celular. Las bacterias gramnegativas se habrían originado a partir de una grampositiva que adquirió la membrana externa como protección contra el medio externo, en especial contra antibióticos producidos por otras Gram positivas.[23]

Algunos árboles genómicos como el de la derecha, presentan a Firmicutes como un clado basal. El árbol filogenético de abajo, está basado en genes codificadores de proteínas (2005).[51]

 Bacteria 

 Bacillota

 

 Actinomycetota

[A]

 Fusobacteriota

 Thermotogota

[B]

 Deinococcota

 Chloroflexota

[C]

 Cyanobacteriota

Gracilicutes

 Spirochaetota

 FCB 

 PVC 

 Aquificota

 

 Pseudomonadota 

Gráfico derivado de una secuencia de datos completa del genoma que señala a Bacillota como el filo bacteriano más divergente.[52]

De acuerdo con Gupta, [A] (mostrado en este cladograma), representa evolutivamente la adquisición de la membrana externa; [B] es la inserción de la proteína Hsp70, y [C] representa el clado de bacterias didérmicas con inserción de la proteína Hsp60 y la evolución de los genes de la biosínteses de lipopolisacáridos (LPS).[53]

Bajo este punto de vista, habría dos tipos de bacterias didérmicas gramnegativas: las didérmicas típicas con Hsp60 y LPS representadas por los clados Gracilicutes y Cyanobacteria/Melainabacteria; y las didérmicas atípicas representadas por los filos Thermotogota, Fusobacteriota, Synergistota, Elusimicrobiota, Deinococcota y otros.[53]

El descubrimiento de las bacterias ultrapequeñas, las cuales son consideradas primitivas y mayormente monodérmicas, podría significar un respaldo a la hipótesis del ancestro monodérmico.

El ancestro fotosintético[editar]

Árbol filogenético de los seres vivos enfatizando los cambios en la estructura celular y considerando que Bacteria es el dominio más antiguo, de acuerdo con las ideas de Cavalier-Smith.[54]

La siguiente figura muestra un árbol filogenético de los seres vivos basado en las ideas de Cavalier-Smith.[17]​ Según este autor, la raíz del árbol se situaría entre las bacterias Gram-negativas, pues los organismos más antiguos serían fotosintéticos y similares a las bacterias verdes no del azufre (existiendo desde hace 3.500 millones de años), mientras que Archaea y Eukaryota serían relativamente recientes (de hace solo 900 millones años).

El árbol se basa en la estructura celular de los distintos seres vivos enfatizando en la envoltura celular (membrana citoplasmática, pared celular y membrana externa). Según este criterio, el dominio Bacteria contiene organismos con dos tipos distintos de organización básica, Gram-negativa y Gram-positiva, y además podemos subdividir a las Gram-negativas en dos subgrupos en función de la composición de la membrana externa.

Negibacteria (bacterias Gram negativas) presenta dos membranas lipídicas distintas, entre las que se localiza la pared celular, mientras que el resto de los organismos presentan una única membrana lipídica. La hipótesis del citoplasma fuera describe un posible modelo para la aparición de las dos membranas en estas primeras bacterias. Dentro de este grupo podemos distinguir dos subgrupos. Los subgrupos Eobacteria y Glycobacteria se distinguen por la composición de la membrana externa, que presenta solo simples fosfolípidos en los primeros e inserción de moléculas complejas de lipopolisacáridos en los segundos.

Posibacteria (bacterias Gram positivas) presenta una única membrana y la pared de peptidoglicano (mureína) se hace mucho más gruesa. Se considera que las posibacterias proceden de las negibacterias, y no al revés, porque las primeras presentan características moleculares y ultraestructurales más avanzadas. La pérdida de la membrana externa podría ser debida a la hipertrofia de la pared celular, que aumenta la resistencia de estos organismos, pero impide la transferencia de lípidos para formar la membrana externa. Estos organismos fueron probablemente los primeros que colonizaron el suelo.

Archaea y Eukarya probablemente tuvieron como origen una Posibacteria a través de un organismo Neomura que sustituyó la pared celular de peptidoglucano por otra de glicoproteína. A continuación y casi inmediatamente, las arqueas se adaptaron a ambientes calientes y ácidos, reemplazando los lípidos acilo éster de las bacterias por lípidos prenil éter, y usaron las glicoproteínas como una nueva pared rígida. Los eucariontes, en cambio, usaron la nueva superficie de proteínas como una capa flexible para desarrollar la fagocitosis, lo que los llevó, en última instancia, a profundos cambios en la estructura de la célula.

Cavalier-Smith no reconoce a Archaea como un dominio ya que este descendería de bacterias, por lo que usa el término anterior Archaebacteria. El siguiente cladograma muestra más en detalle las relaciones entre los distintos grupos de seres vivos en donde las bacterias tienen un papel central, de acuerdo con las ideas de Cavalier-Smith:[54][17]

 <font color="#008800">LUCA [A] 

Chlorobacteria

 <font color="#008800">[B] 

Hadobacteria

 [C] 
 <font color="#008800">[D] 

Cyanobacteria

 [E] 
 [F] 

Gracilicutes

 [G] 

Eurybacteria

 [H] [I] 

Endobacteria

 [J] 

Actinobacteria

 [K] Neomura  
 [L] 

Archaebacteria

 [M] 

Eukaryota

Leyendas:

Cavalier-Smith (2020) en un análisis de múltiples proteínas ribosómicas ha encontrado soporte para su hipótesis con Cloroflexi como el clado más basal de Cytota y las bacterias siendo parafiléticas de Neomura, pero este árbol difería del anterior en que el ancestro de Neomura estaría entre Planctobacteria, Sphingobacteria o Thermobacteria y las arqueas eran parafiléticas de los eucariotas como lo sugirieron los otros análisis moleculares. Por lo que ahora una versión revisada reconoce el origen de los eucariotas dentro de Archaea y propone que el ancestro más probable de este grupo sea una planctobacteria y no una actinobacteria como se propuso anteriormente.[55]​ Este análisis podría ser un respaldo al ancestro fotosintético y también sugiere que las bacterias como dominio pueden ser directamente un taxón parafilético.

El árbol actualizado de Cavalier-Smith es aproximadamente el siguiente:[55]

Chloroflexi

Eoglycobacteria

Patescibacteria

Armatimonadetes

Melainabacteria

Cyanobacteria

Endobacteria

Actinobacteria

Fusobacteria

Hadobacteria

Aquithermota

Synthermota

Proteobacteria

Spirochaetes

Sphingobacteria (FCB)

Planctobacteria (PVC)

Neomura

Euryarchaeota (incluye a DPANN)

Crenarchaeota s.l (TACK)

Asgardia

Lokiarchaeota

Heimdallarchaeota

Eukaryota

Otros resultados[editar]

Diversos estudios dan resultados muy diferentes. Muchos de ellos no reconocen a Gracilicutes como un supergrupo y son diversos los filos que pueden encontrarse en posición basal. Por ejemplo, en la filogenia de la proteína estructural FtsZ, aparece en posición basal Alphaproteobacteria.[56]​ Un estudio sobre secuencias del ARNr sostiene que es Planctomycetes el filo más divergente,[57]​ aun cuando lo usual en los árboles ARNr es la temprana divergencia de los termófilos. Igualmente un estudio del proteoma coloca a Planctomycetes en esta posición.[5]​ En otros estudios encontramos en posición basal a Deinococcus-Thermus según genes codificadores de proteínas,[20]Spirochaetes según 730 genes,[58]Proteobacteria según marcadores genéticos,[9]Cyanobacteria o Bacteroidetes según secuencias de ARNP, Chlamydiae según la proteína Hsp60 y Tenericutes según la enzima aminoacil ARNt sintetasa.[35]

Todos estos árboles presentados, separan claramente a Bacteria de los otros dominios Archaea y Eukaryota. Sin embargo, otros árboles como los de las enzimas ATPasa o girasa no existe una organización en tres dominios.[35]

Muchos de estos grupos que aparecen como los más divergentes, serían producto de cambios drásticos en el genoma. Por ejemplo, en Tenericutes, Alphaproteobacteria, Chlamydiae y CPR ha habido una importante reducción y/o cambios en el genoma ocasionados por el modo de vida parasitario-endosimbiótico; o cambios relacionados con la complejidad estructural en Spirochaetes y Planctomycetes. Así pues, sugerir que estos grupos son los más antiguos, podría significar caer en un error por el factor de atracción de ramas largas.

Véase también[editar]

Referencias[editar]

  1. Roger Y. Stanier et al 1992. Microbiología. 2.ª Ed. traducción de The Microbial World
  2. O’Malley, Maureen A. (2013-12-XX). «When integration fails: Prokaryote phylogeny and the tree of life». Studies in History and Philosophy of Science Part C: Studies in History and Philosophy of Biological and Biomedical Sciences (en inglés) 44 (4): 551-562. doi:10.1016/j.shpsc.2012.10.003. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  3. O'Malley MA. 2012. When integration fails: Prokaryote phylogeny and the tree of life. Stud Hist Philos Biol Biomed Sci. 2012 Nov 5. pii: S1369-8486(12)00110-0. doi: 10.1016/j.shpsc.2012.10.003.
  4. Henz, Stefan R. et al 2004. Whole-genome prokaryotic phylogeny. Oxford Journals Life Sciences & Mathematics & Physical Sciences Bioinformatics Volume 21, Issue 10Pp. 2329-2335.
  5. a b c d e Jun, Se-Ran; Sims, Gregory E.; Wu, Guohong A.; Kim, Sung-Hou (5 de enero de 2010). «Whole-proteome phylogeny of prokaryotes by feature frequency profiles: An alignment-free method with optimal feature resolution». Proceedings of the National Academy of Sciences (en inglés) 107 (1): 133-138. ISSN 0027-8424. PMID 20018669. doi:10.1073/pnas.0913033107. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  6. Hugenholtz, P.; Pitulle, C.; Hershberger, K. L.; Pace, N. R. (1998-01-XX). «Novel division level bacterial diversity in a Yellowstone hot spring». Journal of Bacteriology 180 (2): 366-376. ISSN 0021-9193. PMID 9440526. doi:10.1128/JB.180.2.366-376.1998. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  7. Nesbo, C. L.; L'Haridon, S.; Stetter, K. O.; Doolittle, W. F. (2001-03). «Phylogenetic analyses of two "archaeal" genes in thermotoga maritima reveal multiple transfers between archaea and bacteria». Molecular Biology and Evolution 18 (3): 362-375. ISSN 0737-4038. PMID 11230537. doi:10.1093/oxfordjournals.molbev.a003812. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  8. a b c Boussau, Bastien; Guéguen, Laurent; Gouy, Manolo (3 de octubre de 2008). Unrooted phylogenetic tree obtained from 56 genes of Bacteria based on the recoded alignment.]. «Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria». BMC Evolutionary Biology 8 (1): 272. ISSN 1471-2148. doi:10.1186/1471-2148-8-272. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  9. a b Rinke, Christian; Schwientek, Patrick; Sczyrba, Alexander; Ivanova, Natalia N.; Anderson, Iain J.; Cheng, Jan-Fang; Darling, Aaron; Malfatti, Stephanie et al. (25 de julio de 2013). Figure 2: Maximum-likelihood phylogenetic inference of Archaea and Bacteria.. «Insights into the phylogeny and coding potential of microbial dark matter». Nature (en inglés) 499 (7459): 431-437. ISSN 0028-0836. doi:10.1038/nature12352. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  10. Gupta, R. S. (1998-12-XX). «Protein phylogenies and signature sequences: A reappraisal of evolutionary relationships among archaebacteria, eubacteria, and eukaryotes». Microbiology and molecular biology reviews: MMBR 62 (4): 1435-1491. ISSN 1092-2172. PMID 9841678. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  11. Karrie A. Weber et al 2006. Microorganisms pumping iron: anaerobic microbial iron oxidation and reduction. Figure 3 - Phylogenetic affiliation of microorganisms contributing to iron redox cycling. Nature Reviews Microbiology 4, 752-764
  12. Weber, Karrie A.; Achenbach, Laurie A.; Coates, John D. (2006-10). «Microorganisms pumping iron: anaerobic microbial iron oxidation and reduction». Nature Reviews Microbiology (en inglés) 4 (10): 752-764. ISSN 1740-1534. doi:10.1038/nrmicro1490. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  13. Donald E. Canfield et al. 2005. Aquatic Geomicrobiology, Advances in Marine biology. 8. Phototrophic sulfide oxidation. 8.4 A note on evolution. Vol. 48
  14. Lockhart, P J; Larkum, A W; Steel, M; Waddell, P J; Penny, D (5 de marzo de 1996). «Evolution of chlorophyll and bacteriochlorophyll: the problem of invariant sites in sequence analysis.». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 93 (5): 1930-1934. ISSN 0027-8424. PMID 8700861. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  15. Kuo-Hsiang Tang 2012. Functional Genomics of Anoxygenic Green Bacteria Chloroflexi Species and Evolution of Photosynthesis. Biochemistry, Prof. Deniz Ekinci (Ed.), ISBN 978-953-51-0076-8, InTech, China
  16. Biochemistry.. Intech. 2012. ISBN 953-51-0076-9. OCLC 894299618. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  17. a b c d e Cavalier-Smith, Thomas (2006). «Rooting the tree of life by transition analyses». Biology Direct 1 (1): 19. PMC 1586193. PMID 16834776. doi:10.1186/1745-6150-1-19. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  18. Boussau et al. 2008. Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria. Unrooted tree obtained from the concatenation of rplL-rpoB-rpoC. BMC Evolutionary Biology 2008 8:272
  19. Boussau, Bastien; Guéguen, Laurent; Gouy, Manolo (3 de octubre de 2008). «Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria». BMC Evolutionary Biology 8 (1): 272. ISSN 1471-2148. doi:10.1186/1471-2148-8-272. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  20. a b c Wu, Dongying; Hugenholtz, Philip; Mavromatis, Konstantinos; Pukall, Rüdiger; Dalin, Eileen; Ivanova, Natalia N.; Kunin, Victor; Goodwin, Lynne et al. (2009-12-XX). «A phylogeny-driven genomic encyclopaedia of Bacteria and Archaea». Nature (en inglés) 462 (7276): 1056-1060. ISSN 0028-0836. PMC 3073058. PMID 20033048. doi:10.1038/nature08656. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  21. Cheryl P. Andam & J. Peter Gogarten 2011. Biased gene transfer in microbial evolution. Figure 1 | Phylogenetic analysis of bacterial tyrosyl-tRNA synthetase amino acid sequences and the corresponding concatenated 16S–23S ribosomal RNA phylogeny. Nature Reviews Microbiology 9, 543-555
  22. Andam, Cheryl P.; Gogarten, J. Peter (2011-07). «Biased gene transfer in microbial evolution». Nature Reviews Microbiology (en inglés) 9 (7): 543-555. ISSN 1740-1534. doi:10.1038/nrmicro2593. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  23. a b R. Gupta & E. Griffiths 2002. Critical Issues in Bacterial Phylogeny. Archivado el 1 de febrero de 2014 en Wayback Machine. TPB 61, 427
  24. Boussau, Bastien et al 2008. Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria. BMC Evolutionary Biology 2008, 8:272 doi:10.1186/1471-2148-8-272
  25. Boussau, Bastien; Guéguen, Laurent; Gouy, Manolo (3 de octubre de 2008). «Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria». BMC Evolutionary Biology 8 (1): 272. ISSN 1471-2148. PMC 2584045. PMID 18834516. doi:10.1186/1471-2148-8-272. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  26. 'The All-Species Living Tree' Project."16S rRNA-based LTP release 111 (full tree)" Archivado el 23 de septiembre de 2015 en Wayback Machine.. Silva Comprehensive Ribosomal RNA Database [3]. Revisado 19-02-2014
  27. Woese, C. R.; Kandler, O.; Wheelis, M. L. (1 de junio de 1990). «Towards a natural system of organisms: proposal for the domains Archaea, Bacteria, and Eucarya.». Proceedings of the National Academy of Sciences (en inglés) 87 (12): 4576-4579. ISSN 0027-8424. PMID 2112744. doi:10.1073/pnas.87.12.4576. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  28. Woese, Carl R.; O Kandler, M L Wheelis (1990). "Towards a natural system of organisms: proposal for the domains Archaea, Bacteria, and Eucarya". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 87 (12): 4576–4579
  29. Vollmer, Waldemar (2012-01). «Bacterial outer membrane evolution via sporulation?». Nature Chemical Biology (en inglés) 8 (1): 14-18. ISSN 1552-4469. doi:10.1038/nchembio.748. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  30. Waldemar Vollmer 2012. Bacterial outer membrane evolution via sporulation? Nature Chemical Biology 8, 14–18
  31. Fabia U Battistuzzi et al 2004. A genomic timescale of prokaryote evolution: insights into the origin of methanogenesis, phototrophy, and the colonization of land. BMC Evolutionary Biology 2004, 4(1):44 doi:10.1186/1471-2148-4-44
  32. Battistuzzi, Fabia U.; Feijao, Andreia; Hedges, S. Blair (9 de noviembre de 2004). «A genomic timescale of prokaryote evolution: insights into the origin of methanogenesis, phototrophy, and the colonization of land». BMC Evolutionary Biology 4 (1): 44. ISSN 1471-2148. PMC 533871. PMID 15535883. doi:10.1186/1471-2148-4-44. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  33. Shaul, Shaul; Nussinov, Ruth; Pupko, Tal (2006). «Paths of lateral gene transfer of lysyl-aminoacyl-tRNA synthetases with a unique evolutionary transition stage of prokaryotes coding for class I and II varieties by the same organisms.». BMC Evolutionary Biology 6 (1): 22. PMC 1475646. PMID 16529662. doi:10.1186/1471-2148-6-22. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  34. Andam, Cheryl P.; Gogarten, J. Peter (2011-07). Phylogenetic analysis of bacterial tyrosyl-tRNA synthetase amino acid sequences and the corresponding concatenated 16S–23S ribosomal RNA phylogeny.. «Biased gene transfer in microbial evolution». Nature Reviews Microbiology (en inglés) 9 (7): 543-555. ISSN 1740-1534. doi:10.1038/nrmicro2593. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  35. a b c WL Karl-Heinz 2005. Microbial Phylogeny and Evolution. 3. Molecular Phylogeny of Bacteria Based on Comparative Sequence Analysis of Conserved Genes. Ed. by Jan Sapp, Oxford Universty Press, Inc.
  36. 'The All-Species Living Tree' Project."16S rRNA-based LTP release 111 (full tree)" Archivado el 23 de septiembre de 2015 en Wayback Machine.. Silva Comprehensive Ribosomal RNA Database [3]. Revisado 19-02-2014
  37. Pavan, María Elisa; Pavan, Esteban E.; Glaeser, Stefanie P.; Etchebehere, Claudia; Kämpfer, Peter; Pettinari, María Julia; López, Nancy I. (1 de mayo de 2018). «Proposal for a new classification of a deep branching bacterial phylogenetic lineage: transfer of Coprothermobacter proteolyticus and Coprothermobacter platensis to Coprothermobacteraceae fam. nov.». International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology (en inglés) 68 (5): 1627-1632. ISSN 1466-5026. doi:10.1099/ijsem.0.002720. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  38. Battistuzzi & Hedges 2009. The Timetree of Life. II Eubacteria. Oxford Universty Press. NY.
  39. Battistuzzi, Fabia U.; Feijao, Andreia; Hedges, S. Blair (9 de noviembre de 2004). «A genomic timescale of prokaryote evolution: insights into the origin of methanogenesis, phototrophy, and the colonization of land». BMC Evolutionary Biology 4 (1): 44. ISSN 1471-2148. PMC 533871. PMID 15535883. doi:10.1186/1471-2148-4-44. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  40. a b Battistuzzi, Fabia U.; Hedges, S. Blair (1 de febrero de 2009). «A Major Clade of Prokaryotes with Ancient Adaptations to Life on Land». Molecular Biology and Evolution 26 (2): 335-343. ISSN 0737-4038. doi:10.1093/molbev/msn247. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  41. Toft, Christina; Andersson, Siv G. E. (2010-07-XX). Global phylogeny of host-associated bacteria.. «Evolutionary microbial genomics: insights into bacterial host adaptation». Nature Reviews Genetics (en inglés) 11 (7): 465-475. ISSN 1471-0056. doi:10.1038/nrg2798. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  42. S. Blair Hedges & Sudhir Kumar 2009, The Timetree of Life, p. 113, Oxford University Press
  43. Hug, Laura A.; Baker, Brett J.; Anantharaman, Karthik; Brown, Christopher T.; Probst, Alexander J.; Castelle, Cindy J.; Butterfield, Cristina N.; Hernsdorf, Alex W. et al. (11 de abril de 2016). «A new view of the tree of life». Nature Microbiology (en inglés) 1 (5): 1-6. ISSN 2058-5276. doi:10.1038/nmicrobiol.2016.48. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  44. Wolf, Yuri I.; Rogozin, Igor B.; Grishin, Nick V.; Tatusov, Roman L.; Koonin, Eugene V. (23 de octubre de 2001). «Genome trees constructed using five different approaches suggest new major bacterial clades». BMC Evolutionary Biology 1 (1): 8. ISSN 1471-2148. PMC 60490. PMID 11734060. doi:10.1186/1471-2148-1-8. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  45. Bern, Marshall; Goldberg, David (31 de mayo de 2005). A rooted phylogenetic tree of Bacteria. «Automatic selection of representative proteins for bacterial phylogeny». BMC Evolutionary Biology 5 (1): 34. ISSN 1471-2148. doi:10.1186/1471-2148-5-34. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  46. Boussau, Bastien; Guéguen, Laurent; Gouy, Manolo (3 de octubre de 2008). Phylogenetic tree obtained from 56 genes of Bacteria.. «Accounting for horizontal gene transfers explains conflicting hypotheses regarding the position of aquificales in the phylogeny of Bacteria». BMC Evolutionary Biology 8 (1): 272. ISSN 1471-2148. PMC 2584045. PMID 18834516. doi:10.1186/1471-2148-8-272. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  47. Raymann, Kasie; Brochier-Armanet, Céline; Gribaldo, Simonetta (26 de mayo de 2015). «The two-domain tree of life is linked to a new root for the Archaea». Proceedings of the National Academy of Sciences (en inglés) 112 (21): 6670-6675. ISSN 0027-8424. PMC 4450401. PMID 25964353. doi:10.1073/pnas.1420858112. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  48. Gareth A. Coleman, Adrián A. Davín, Tara Mahendrarajah, Anja Spang, Philip Hugenholtz, Gergely J. Szöllősi, Tom A. Williams. (2020). A rooted phylogeny resolves early bacterial evolution. Biorxiv.
  49. Mendler, K; Chen, H; Parks, DH; Hug, LA; Doxey, AC (2019). «AnnoTree: visualization and exploration of a functionally annotated microbial tree of life». Nucleic Acids Research 47 (9): 4442-4448. PMC 6511854. PMID 31081040. doi:10.1093/nar/gkz246. Archivado desde el original el 23 de abril de 2021. Consultado el 27 de diciembre de 2021. 
  50. «GTDB release 05-RS95». Genome Taxonomy Database. 
  51. Gupta, R. S. (2005). Molecular Sequences and the Early History of Life. In "Microbial Phylogeny and Evolution: Concepts and Controversies" (J. Sapp, Ed.), Oxford University Press, New York. Web: Branching Order of Bacterial Phyla.
  52. Ciccarelli, Francesca D.; Doerks, Tobias; von Mering, Christian; Creevey, Christopher J.; Snel, Berend; Bork, Peer (3 de marzo de 2006). «Toward automatic reconstruction of a highly resolved tree of life». Science (New York, N.Y.) 311 (5765): 1283-1287. ISSN 1095-9203. PMID 16513982. doi:10.1126/science.1123061. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  53. a b Gupta, Radhey S. (2011-08-XX). «Origin of diderm (Gram-negative) bacteria: antibiotic selection pressure rather than endosymbiosis likely led to the evolution of bacterial cells with two membranes». Antonie van Leeuwenhoek (en inglés) 100 (2): 171-182. ISSN 0003-6072. PMC 3133647. PMID 21717204. doi:10.1007/s10482-011-9616-8. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  54. a b Cavalier-Smith T (2006). «Cell evolution and Earth history: stasis and revolution». Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 361 (1470): pp. 969–1006.
  55. a b Cavalier-Smith, Thomas; Chao, Ema E-Yung (1 de mayo de 2020). «Multidomain ribosomal protein trees and the planctobacterial origin of neomura (eukaryotes, archaebacteria)». Protoplasma (en inglés) 257 (3): 621-753. ISSN 1615-6102. PMC 7203096. PMID 31900730. doi:10.1007/s00709-019-01442-7. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  56. M. Sánchez y M. Vicente 2008. Distribución filogenética simplificada de la proteína FtsZ.
  57. Brochier, Céline; Philippe, Hervé (2002-05-XX). Figure 1. Prokaryotic phylogenetic tree based on conserved positions in ribosomal RNA.. «A non-hyperthermophilic ancestor for Bacteria». Nature (en inglés) 417 (6886): 244-244. ISSN 0028-0836. doi:10.1038/417244a. Consultado el 19 de abril de 2021. 
  58. Daubin, V. (1 de julio de 2002). «A Phylogenomic Approach to Bacterial Phylogeny: Evidence of a Core of Genes Sharing a Common History». Genome Research 12 (7): 1080-1090. PMC 186629. PMID 12097345. doi:10.1101/gr.187002. Consultado el 19 de abril de 2021. 

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