Cdk1

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Cell division cycle 2,
G1 to S and G2 to M
Identificadores
Símbolos cdc2 (HUGO: 1722); CDC28A, CDK1, DKFZp686L20222, MGC111195
Identificadores externos OMIM116940 GeneCardsGen cdc2
Locus Cr. 10 q21.2
Ortología
Especies Humano Ratón
Entrez 983 n/a
UniProt P06493 n/a
RefSeq (mRNA) NP_001777 n/a

La quinasa dependiente de ciclina 1, también conocida como Cdk1 o Cdc2 (de sus siglas en inglés "cell division control protein 2 homolog"), es una proteína muy conservada que funciona como una serina/treonina quinasa, y juega un papel clave en la regulación del ciclo celular.[1] Esta proteína ha sido muy estudiada en las levaduras S. cerevisiae y S. pombe, donde es codificada por los genes cdc28 y cdc2, respectivamente.[2] En humanos, Cdk1 es codificada por el gen cdc2.[3] Junto el resto de ciclinas, Cdk1 forma un complejo que fosforila numerosos y diversos sustratos diana. La fosforilación de estas proteínas controlan la progresión del ciclo celular.

Estructura[editar]

Estructura tridimensional de Cdk2, un homólogo de Cdk1.

Cdk1 es una proteína pequeña (de aproximadamente unos 34 kDa) altamente conservada. El homólogo humano de Cdk1, cdc2, comparte una identidad en su secuencia de aminoácidos de aproximadamente el 60-65% con respecto a la proteína de levadura. Además, cdc2 es capaz de sustituir a su homólogo cdc28 en un mutante de levadura para ese gen.[4] [5] Cdk1 se compone principalmente por un motivo proteína quinasa, que comparte con otras quinasas. Y, al igual que otras quinasas, Cdk1 contiene un surco donde encaja la molécula de ATP. Los sustratos de Cdk1 se unen cerca de la apertura del surco, donde se cataliza la unión covalente del γ-fosfato al átomo de oxígeno del grupo hidroxilo de los residuos serina/treonina del sustrato.

Además de este sitio catalítico, Cdk1, al igual que sucede con otras quinasas dependientes de ciclinas, contiene un bucle T (T-loop) el cual, en ausencia de interacción con una ciclina, impide la unión del sustrato al sitio activo de Cdk1. Cdk1 también contiene una hélice PSTAIRE, la cual, tras la unión de la ciclina, se mueve y reorganiza el sitio activo, facilitando la actividad quinasa.[6]

Función[editar]

Diagrama donde se puede apreciar el papel de Cdk1 en la progresión del ciclo celular de S. cerevisiae. El complejo Cln3-Cdk1 da lugar a la actividad del complejo Cln1,2-Cdk1, este a su vez a la actividad del complejo Clb5,6-Cdk1 y finalmente a la actividad del complejo Clb1-4-Cdk1.[1]

Cuando se une a sus correspondientes ciclinas, la fosforilación de Cdk1 controla la progresión del ciclo celular. La actividad de Cdk1 es mejor conocida en S. cerevisaie, razón por la cual es la actividad descrita a continuación. En esta levadura, la entrada en el ciclo celular es controlada por dos complejos reguladores, SBF (factor de unión a SCB) y MBF (factor de unión a MCB). Estos dos complejos controlan la transcripción de genes implicados en el paso G1/S, pero normalmente están inactivos. SBF es inhibido por la proteína Whi5, pero, cuando es fosforilada por el complejo Cln3-Cdk1, Whi5 es traslocada fuera del núcleo celular, permitiendo así la transcripción del regulón G1/S, el cual incluye las ciclinas Cln1 y Cln2.[7] La actividad de estas ciclinas prepara la entrada en la fase S del ciclo celular (por ejemplo, favoreciendo la duplicación de los centrómeros) y da lugar al aumento de ciclinas S (Clb5 y Clb6 en S. cerevisiae). El complejo Clb5,6-Cdk1 controla directamente el inicio del origen de replicación;[8] sin embargo, dicho complejo es inhibido por Sic1, evitando un inicio prematuro de la fase S.

La actividad de los complejos Cln1,2 y Clb5,6-Cdk1 da lugar a un repentino descenso de los niveles de Sic1, permitiendo así la entrada en la fase S. Finalmente, la fosforilación llevada a cabo las ciclinas M (Clb1, Clb2, Clb3 y Clb4) acomplejadas con Cdk1 da lugar al ensamblaje del huso mitótico y al alineamiento de las cromátidas. La fosforilación de Cdk1 también conduce a la activación de ubiqitina ligasa APCCdc20, lo que permite la segregación de las cromátidas y la degradación de las ciclinas M. Esta destrucción de las ciclinas M conduce a los últimos eventos de la mitosis (desensamblaje del huso, salida de la fase M, etc).

Regulación[editar]

Dado su papel esencial en la progresión del ciclo celular, Cdk1 se encuentra fuertemente regulada. La regulación más inmediata es la que viene dada por su unión con sus respectivas ciclinas. La unión con las ciclinas altera el acceso al sitio activo de Cdk1, permitiendo su actividad. Además, las ciclinas confieren especificidad a la actividad de Cdk1. Al menos algunas ciclinas contienen una región hidrofóbica que podría interaccionar directamente con los sustratos, confiriendo así especificidad a las dianas.[9] Además, las ciclinas pueden actuar como marcadores en Cdk1 de modo que sea dirigido a diversas y particulares localizaciones subcelulares.

Por otro lado, Cdk1 también puede ser regulada por fosforilación de un residuo de tirosina conservado (Tyr15 en humanos), que está implicado en la inhibición de Cdk1. Esta fosforilación parece alterar la orientación del ATP, impidiendo que la actividad quinasa sea eficiente. Por ejemplo, en S. pombe, la síntesis incompleta de ADN podría conducir a la estabilización de esta fosforilación y así evitar la progresión de la mitosis.[10] La quinasa Wee1, conservada en todos los eucariotas, fosforila el residuo de Tyr15, mientras que fosfatasas de la familia Cdc25, contrarrestan esta actividad. El balance entre ambos parece ayudar en el control de la progresión del ciclo celular. La expresión de Wee1 es controlada por Cdr1, Cdr2 y Pom1.

Los complejos Cdk1-ciclina también son regulados por la unión directa de proteínas inhibidoras de Cdks (CKIs). Una de estas proteínas, previamente presentada, es Sic1. Sic1 es un inhibidor estequiométrico que se une directamente a los complejos Clb5,6-Cdk1. La fosforilación múltiple del complejo Cdk1-Cln1/2 sobre Sic1 parece ser la responsable de promover la ubiquitinación y posterior destrucción de Sic1, y como consecuencia, la entrada en la fase S. Sólo cuando la inhibición producida por Sic1 es superada, la actividad de Clb5,6 puede tener lugar y así comenzar la fase S.

Interacciones[editar]

La proteína Cdk1 ha demostrado ser capaz de interaccionar con:

Véase también[editar]

Referencias[editar]

  1. a b Morgan, David L. (2007). The cell cycle: principles of control. London: New Science Press. pp. 30–31. ISBN 0-19-920610-4. 
  2. Nasmyth K (April 1993). «Control of the yeast cell cycle by the Cdc28 protein kinase». Curr. Opin. Cell Biol. 5 (2):  pp. 166–79. PMID 8507488. 
  3. Lee MG, Nurse P (Jun 1987). «Complementation used to clone a human homologue of the fission yeast cell cycle control gene cdc2». Nature 327 (6117):  pp. 31–5. doi:10.1038/327031a0. PMID 3553962. 
  4. Ninomiya-Tsuji J, Nomoto S, Yasuda H, Reed SI, Matsumoto K (October 1991). «Cloning of a human cDNA encoding a CDC2-related kinase by complementation of a budding yeast cdc28 mutation». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88 (20):  pp. 9006–10. PMID 1717994. 
  5. De Bondt HL, Rosenblatt J, Jancarik J, Jones HD, Morgan DO, Kim SH (June 1993). «Crystal structure of cyclin-dependent kinase 2». Nature 363 (6430):  pp. 595–602. doi:10.1038/363595a0. PMID 8510751. 
  6. Jeffrey PD, Russo AA, Polyak K, Gibbs E, Hurwitz J, Massagué J, Pavletich NP (July 1995). «Mechanism of CDK activation revealed by the structure of a cyclinA-CDK2 complex». Nature 376 (6538):  pp. 313–20. doi:10.1038/376313a0. PMID 7630397. 
  7. Skotheim JM, Di Talia S, Siggia ED, Cross FR. (July 2008). «Positive feedback of G1 cyclins ensures coherent cell cycle entry.». Nature 454 (7202):  pp. 291–6. PMID 18633409. 
  8. Cross FR, Yuste-Rojas M, Gray S, Jacobson MD. (July 1999). «Specialization and targeting of B-type cyclins.». Mol Cell. 4 (1):  pp. 11–9. PMID 10445023. 
  9. Brown NR, Noble ME, Endicott JA, Johnson LN (November 1999). «The structural basis for specificity of substrate and recruitment peptides for cyclin-dependent kinases». Nat. Cell Biol. 1 (7):  pp. 438–43. doi:10.1038/15674. PMID 10559988. 
  10. Elledge SJ (December 1996). «Cell cycle checkpoints: preventing an identity crisis». Science 274 (5293):  pp. 1664–72. PMID 8939848. 
  11. Pathan N, Aime-Sempe C, Kitada S, Basu A, Haldar S, Reed JC (2001). «Microtubule-targeting drugs induce bcl-2 phosphorylation and association with Pin1». Neoplasia 3 (6):  pp. 550–9. doi:10.1038/sj/neo/7900213. PMID 11774038. 
  12. Pathan N, Aime-Sempe C, Kitada S, Haldar S, Reed JC (2001). «Microtubule-targeting drugs induce Bcl-2 phosphorylation and association with Pin1». Neoplasia 3 (1):  pp. 70–9. doi:10.1038/sj/neo/7900131. PMID 11326318. 
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