Tolerancia a la desecación en organismos fotosintéticos

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La tolerancia a la desecación es la capacidad de algunos seres vivos para sobrevivir eventos extremos de deshidratación en su organismo sin sufrir daños irreparables.[1]​ En general, se considera que los organismos fotosintéticos tolerantes a la desecación pueden equilibrar su contenido hídrico con el del aire (a una humedad relativa menor o igual al 50%) y después restablecer su actividad metabólica al rehidratarse.[2]​ Otros parámetros umbrales, de mayor relevancia fisiológica, que también pueden emplearse para reconocer organismos tolerantes son el “potencial hídrico protoplasmático” (los organismos tolerantes a la desecación sobreviven valores de -25 MPa o incluso más negativos), y el “contenido hídrico absoluto” (los organismos tolerantes, sobreviven a valores menores o iguales a 0,1 g de agua por g de peso seco) ,.[3]​[4]​

El término tolerancia a la desecación no debe confundirse con el término tolerancia a la sequía. De hecho las estrategias empleadas por las especies tolerantes a la desecación para afrontar variaciones ambientales en la disponibilidad de agua son notablemente diferentes a las empleadas por las especies tolerantes a la sequía.[5]​ En el caso de las plantas, las especies tolerantes a la sequía luchan contra la pérdida de agua de sus tejidos para tratar de mantener un turgor celular (contenido de agua) adecuado que les permita seguir realizando sus funciones vitales. Por el contrario, las plantas tolerantes a la desecación experimentan la deshidratación como una condición de estrés transitorio, y activan mecanismos que les permiten sobrevivir la deshidratación severa: las funciones celulares se interrumpen y las plantas entran en un estado quiescente de anhidrobiosis en el que pueden permanecer a medio y/o largo plazo (incluso años en algunas especies). Así, la tolerancia a la desecación puede entenderse, de hecho, como una estrategia a través de la que “huir” de la sequía[6]​ ,.[7]​

El término tolerancia a la desecación tampoco debe confundirse con el término poiquilohidria. En este caso, incluso la bibliografía es a veces confusa ya que ambos términos no son siempre empleados con rigurosidad. Poiquilohidria hace referencia a la tendencia de algunos organismos a equilibrar su contenido hídrico con la humedad del ambiente que les rodea (por ejemplo aire a una humedad relativa del 50 %). Por el contrario, el término “tolerancia a la desecación” hace referencia a la capacidad del organismo para sobrevivir a una pérdida de agua muy severa en sus tejidos, independientemente de su capacidad para prevenir dicha pérdida de agua (por ejemplo a través de ceras que recubran sus hojas, o por medio del cierre estomático, etc.)

La principal diferencia entre un organismo poiquilohídrico y un organismo tolerante a la desecación subyace en la capacidad del organismo en cuestión para restablecer sus funciones vitales después de un evento de deshidratación severa. La supervivencia al evento de deshidratación severa será sólo posible en un organismo tolerante a la desecación pero no en un organismo poiquilohídrico. Como ejemplo, las macroalgas que habitan aguas profundas carecen de mecanismos que les ayuden a controlar su contenido hídrico (son poiquilohídricas), de manera que se deshidratarán si permanecen un tiempo suficiente fuera del agua (por ejemplo, si las dejamos secar sobre una mesa durante varias horas). Sin embargo, serán incapaces de sobrevivir tal deshidratación (no son tolerantes a la desecación). En resumen, los organismos tolerantes a la desecación podrían considerarse poiquilohídricos mientras que no todos los organismos poiquilohídricos son tolerantes a la desecación ([8]​ ,[9]​).

Historia y descubrimiento[editar]

Anton van Leeuwenhoek describió por vez primera la tolerancia a la desecación en 1702 cuando poco después de inventar el microscopio, observó que ciertos “animáculos” (se trataba de rotíferos) revivían tras re-humedecer los sedimentos secos sobre los que se desarrollaban (Keilin 1959). Unos años más tarde, en 1743, Henry Baker anunció a la “Royal Society” que algunos animales eran capaces de deshidratarse hasta equilibrarse con la humedad del aire y después retomar sus funciones normales al rehumedecerse. Aun así, la existencia de la tolerancia a la desecación no fue aceptada por la comunidad científica hasta medio siglo después (Keilin 1959). Hacia la mitad del siglo XIX, otros observadores ya habían apreciado la presencia de esta peculiar estrategia en dos filos más de animales: los tardígrados y los nemátodos. Actualmente, en el siglo XXI, la tolerancia a la desecación ha sido ya descrita en otros cuatro filos de animales, además de en bacterias, hongos, un gran números de briófitos (término que agrupa a los musgos, hepátias y antocerotas), la mayoría de líquenes, y en más de 300 especies de plantas vasculares ,,.[10]​[11]​[12]​

Distribución, origen y evolución[editar]

La tolerancia a la desecación en organismos fotosintéticos es una característica corriente en algunos órganos y estructuras especiales, frecuentemente relacionados con la dispersión y la reproducción. De hecho, muchos organismos fotosintéticos presentan la capacidad de sobrevivir a la desecación en forma de esporas, polen, semillas, rizomas, etc. Por el contrario, la tolerancia a la desecación en tejidos fotosintéticos no directamente relacionados con la reproducción, como pueden ser por ejemplo las hojas, presenta una distribución mucho más restrictiva siendo muy común entre los líquenes y los briófitos (musgos, hepáticas y antocerotas), menos común entre las algas, rara entre los pteridofitos (helechos y grupos afines), muy extraordinaria entre las angiospermas (plantas con flor) y aún no descrita hasta la fecha en gimnospermas (coníferas) ,.[13]​[14]​ Algunos autores defienden que el origen de la tolerancia a la desecación en tejidos vegetativos pudo representar un papel crucial en la colonización del medio terrestre por parte de algunas plantas primitivas que habitaban medios de agua dulce.[14]​ Posteriormente, la evolución de organismos fotosintéticos cada vez más complejos, estructural y morfológicamente, junto con la adquisición de mecanismos para preservar el agua dentro de las especies vasculares, podrían haber dado lugar a la pérdida de la tolerancia a la desecación en tejidos vegetativos (hojas). Sin embargo, los genes involucrados en esta estrategia podrían haberse preservado de manera silenciada en el genoma de las plantas que sólo se expresarían en respuesta a eventos de deshidratación.[14]​ Un ejemplo extraordinario, que apoya esta teoría se encuentra en la especie Lindernia brevidens. Lindernia brevidens es un pariente cercano de Craterostigma plantagineum una planta muy empleada como modelo en estudios de tolerancia a la desecación. Se ha descrito que Lindernia brevidens, que es endémica del bosque lluvioso de las montañas de Kenia y Tanzania, es tolerante a la desecación, incluso aunque nunca experimenta eventos de reducida disponibilidad de agua en su ambiente natural.[15]​

Tipos de la tolerancia[editar]

Los organismos fotosintéticos tolerantes a la desecación pueden clasificarse en dos grupos atendiendo al nivel de retención de clorofila en sus tejidos deshidratados: organismos homoioclorófilos y organismos poiquiloclorófilos.[16]​ La mayoría de algas, briófitos, helechos y angiospermas presentan una estrategia homoioclorofílica, esto es, que las clorofilas y la estructura general del cloroplasto se preservan durante el estado deshidratado. La homoioclorofilia resulta una estrategia ventajosa durante la rehidratación, ya que la actividad fotosintética puede recobrarse con rapidez (en unas pocas horas o incluso minutos). Sin embargo, implica también el inconveniente de poseer un aparato fotosintético semi-activo durante la desecación, cuando la fijación de carbono cesa pero las clorofilas siguen excitándose en presencia de luz. Esta situación conlleva graves riesgos de estrés fotooxidativo que la planta habrá de contrarrestar: en el estado deshidratado, las clorofilas siguen absorbiendo energía lumínica que no puede ser transformada en energía química en el aparato fotosintético. Este exceso de energía, puede generar la formación de especies reactivas de oxígeno altamente destructivas en las células de la planta. Tan solo unas pocas especies de angiospermas, todas ellas del grupo de las monocotiledóneas, presentan la estrategia de la poiquiloclorofilia. Las plantas poiquiloclorófilas degradan sus clorofilas y desorganizan la estructura tilacoidal del cloroplasto durante la desecación, reduciendo drásticamente el riesgo de estrés fotooxidativo. Como desventaja, el aparato fotosintético ha de ser re-sintetizado y el cloroplasto reestructurado de nuevo durante la rehidratación,[17]​ con lo que la recuperación de la actividad fotosintética normal conlleva un gran esfuerzo energético y varios días.

Mecanismos de tolerancia[editar]

La deshidratación de los tejidos está ligada fundamentalmente a dos tipos de daños físicos y bioquímicos que los organismos tolerantes a la desecación han de prevenir o reparar: por un lado, los daños relacionados con la desorganización de ultraestructuras (como la pérdida de integridad en las membranas celulares y los cambios de configuración de macromoléculas como las proteínas)[18]​ y por otro lado, los daños asociados al estrés oxidativo.[19]​

El enrollamiento o plegamiento de los tejidos fotosintéticos (hojas, frondes, filidios, talos, etc.) es una respuesta generalizada de la mayoría de organismos fotosintéticos a la deshidratación, incluyendo las angiospermas, helechos, briófitos, líquenes, y macroalgas ,,.[20]​[21]​[13]​ La parte superior de las hojas (el haz) queda en el interior del plegamiento mientras que la cara inferior (el envés) queda al descubierto. El envés está además con frecuencia recubierto de pelos, escamas o pigmentos rojos (antocianinas) que filtran la luz disminuyendo notablemente la cantidad de energía lumínica que puede llegar a ser absorbida por las clorofilas. De este modo, se protege a los tejidos fotosintéticos de la fotoinhibición[22]​ y de daños fotooxidativos. La capacidad de plegamiento de las hojas, se relaciona con una reducción acusada del volumen celular (debido a la pérdida de agua) y una inusual flexibilidad de las paredes celulares en algunas plantas tolerantes a la desecación.

Mecanismos frente al estrés mecánico: Cambios en la pared celular y la vacuola[editar]

La deshidratación induce una inevitable reducción del volumen celular que podría causar una separación física entre la membrana y la pared celular y una ruptura de las conexiones intercelulares (plasmodesmos) de consecuencias letales para el organismo. En las plantas tolerantes a la desecación, estas posibles consecuencias del estrés mecánico son incompatibles con la supervivencia, y por ello los previenen por medio de dos estrategias principales. Por un lado, la reducción en el volumen celular puede verse acompañada por un incremento en la flexibilidad de la pared celular ,,[23]​[24]​ de manera que se evita la separación entre la membrana y la pared. Este aumento de flexibilidad ocurre gracias a cambios específicos en la composición química de la pared, tales como el aumento de pectinas y xyloglucanos desesterificados, o la síntesis de expansinas, que son las principales proteínas involucradas en la flexibilidad de la pared ,.[25]​[23]​ Por otro lado, la pérdida de volumen celular puede evitarse a través del reemplazamiento del agua de la vacuola por solutos compatibles tales como pequeñas proteínas, aminoácidos y azúcares.[26]​ En paralelo al re-emplazamiento del agua, la enorme vacuola central se divide normalmente en pequeñas vacuolas de menor tamaño. Esta fragmentación también contribuye al mantenimiento de la estructura celular, ya que pequeñas y numerosas vacuolas proporcionan una mayor estabilidad mecánica ,.[27]​[28]​ Ambas estrategias para afrontar el estrés mecánico durante la deshidratación no son excluyentes y pueden presentarse simultáneamente en una misma célula.[5]​

El estado vítreo[editar]

Preservar la estructura y funcionalidad de membranas y proteínas es crucial para sobrevivir a la deshidratación. Para ello, las plantas tolerantes a la desecación han desarrollado mecanismos basados en la sustitución de las moléculas de agua de sus tejidos por otras moléculas como azúcares y aminoácidos que, por medio de sus grupos OH, son capaces de formar puentes de hidrógeno con las cabezas polares de los lípidos o con la superficie de las proteínas, manteniendo así su integridad ,.[18]​[24]​ Cuando el contenido de agua intracelular desciende por debajo de 0,8 g de agua por g de peso seco, la viscosidad aumenta notablemente contribuyendo a una reducción en la movilidad molecular.[29]​ Cuando el tejido en deshidratación alcanza valores de, aproximadamente, 0,1 g de agua por g de peso seco (o inferiores) el citoplasma se vitrifica entrando en un estado conocido como el estado vítreo.[30]​ En términos fisicoquímicos, un vidrio se define como un estado metaestable amorfo que se asemeja al estado sólido pero que retiene el desorden molecular propio de un líquido Franks et al. 1991. Un ejemplo cotidianos de una sustancia en estado vítreo a temperatura ambiente podría ser el caramelo. Un vidrio puede definirse también como un líquido extremadamente viscoso que presenta las propiedades físicas de un sólido pero las propiedades termodinámicas de un líquido.[31]​ En este estado, la posición de unas moléculas respecto a otras es desorganizada (al contrario de lo que ocurren en una red cristalina).[32]​ La formación de vidrio intracelular reduce la velocidad de reacciones de deterioro (tales como oxidaciones)[31]​ e imposibilita la actividad enzimática,[33]​ de manera que su establecimiento se considera fundamental para el mantenimiento a largo plazo de la viabilidad de tejidos deshidratados. Las propiedades del estado vítreo dependen de tres factores fundamentales: el contenido de agua, la temperatura y la composición química. La acumulación de azúcares no reductores, como la rafinosa y la trehalosa, y de un tipo de proteínas conocidas con el nombre de “proteínas LEA” (del inglés Late Embriogenesis Abundant) parecen jugar un papel fundamental en la formación del vidrio intracelular durante la deshidratación de tejidos de organismos tolerantes a la desecación.[34]​

Mecanismos frente al estrés oxidativo[editar]

Durante la desecación, la fotosíntesis es inhibida debido a tres factores principalmente: (i) el incremento de la viscosidad celular (que dificulta o imposibilita el movimiento molecular), (ii) la concentración de iones en el citoplasma y (iii) la falta de donador de electrones (las moléculas de agua) para el fotosistema II.[35]​ La paralización de la actividad fotosintética conlleva la sobre-excitación del aparato fotosintético que es exacerbada cuando los tejidos se desecan expuestos a la luz.[36]​ En estas condiciones, los mecanismos antioxidantes de las plantas tolerantes a la desecación, son cruciales para su supervivencia.[37]​ Los antioxidantes hidrofílicos glutatión y ascorbato, y el antioxidante lipofílico zeaxantina, son acumulados durante la deshidratación en la mayoría de organismos fotosintéticos tolerantes a la desecación, como por ejemplo: Ramonda serbica, Myrothammnus flabellifolia, Pelvetia canaliculata, Lobaria pulmonaria, Syntrichia ruralis, Ceterach officinarum, etc. ,,,,.[38]​[37]​[39]​[40]​[41]​

La rehidratación: reactivación del metabolismo y reparación de daños[editar]

Muchos de los estudios realizados hasta el momento se centran en la comprensión de los mecanismos metabólicos que permiten a las plantas tolerantes a la desecación sobrevivir en el estado deshidratado. Sin embargo, resulta cada vez más evidente que los procesos activados durante la rehidratación son cruciales para la reactivación exitosa del metabolismo. Durante la fase inicial de la rehidratación parece darse una producción masiva de especies reactivas de oxígeno que los organismos tolerantes a la desecación son capaces de controlar mediante una eficiente respuesta antioxidante. Dicha producción masiva se ha descrito durante la rehidratación de diversos organismos tales como briófitos[42]​ , líquenes ([43]​ ,[44]​ , y angiospermas.[37]​ Adicionalmente, durante los estadios iniciales de la rehidratación, el control de la entrada de agua en las células podría ser también de especial relevancia para evitar daños físicos debidos a un cambio en el volumen celular demasiado repentino. En este sentido, un grupo de proteínas conocidas como acuaporinas parecen tener una función importante en la regulación del flujo de agua hacia el interior celular[45]​ ,.[46]​ En lo que se refiere al restablecimiento de los procesos metabólicos, la respiración es restablecida casi de inmediato durante la rehidratación, mientras que la actividad fotosintética requiere de tiempos más largos que pueden ir desde unos pocos minutos (es el caso de muchos briófitos y líquenes) hasta incluso varios días (como es el caso de las plantas poiquiloclórofilas). Los estudios más recientes a cerca de la metabolómica y la expresión de genes, revelan la importancia de la protección del aparato fotosintético durante la desecación y la rápida reactivación de la síntesis de proteínas durante la rehidratación como partes clave de la estrategia de la tolerancia a la desecación en organismos fotosintéticos[47]​ . Muchos de los cambios en la expresión de genes necesarios para sobrevivir al estado desecado tienen lugar durante la deshidratación, en muchos casos incluso cuando codifican proteínas que serán empleadas después de la rehidratación.[48]​ Por otra parte, algunos de los mecanismos relacionados con la tolerancia a la desecación, como por ejemplo la acumulación de azúcares osmoprotectores y formadores de vidrio, parecen darse de manera constitutiva en las plantas tolerantes a la desecación.[49]​ A pesar de que aún queda mucho por estudiar antes de que la tolerancia a la desecación de los organismos fotosintéticos pueda llegar a entenderse por completo, cada vez parece más evidente que se trata de un carácter poligénico (muchos genes implicados) que requiere de un eficiente sistema de protección que garantice la integridad de los compartimentos celulares y las macromoléculas. Las moléculas individuales implicadas en tales procesos son en ocasiones específicas de cada especie, pero en general, las proteínas LEA, pequeños azúcares (trehalosa en algunas especies, sacarosa en otras) y moléculas antioxidantes como el glutatión y la zeaxantina parecen comunes a la mayoría de los organismos fotosintéticos tolerantes a la desecación.

Bibliografía[editar]

  • Alpert P (2000) The discovery, scope, and puzzle of desiccation-tolerance in plants. Plant Ecol 151: 5-17
  • Alpert P (2006) Constraints of tolerance: why are desiccation-tolerant organisms so small or rare? J Exp Biol 209: 1575-1584
  • Angell A (1998) Thermodynamics: liquid landscape. Nature 393: 521-523
  • Augusti A, Scartazza A, Navari-Izzo F, Sgherri CLM, Stevanovic B, Brugnoli E (2001) Photosystem II photochemical efficiency, zeaxanthin and antioxidant contents in the poikilohydric Ramonda serbica during dehydration and rehydration. Photosynth Res 67: 79-88
  • Barták M, Solhayg KA, Vrablikova H, Gauslaa Y (2006) Curling during desiccation protects the foliose lichen Lobaria pulmonaria against photoinhibition. Oecol 149: 553-560
  • Bartels D and Salamini F (2001) Desiccation tolerance in the resurrection plant Craterostigma plantagineum: A contribution to the study of drought tolerance at the molecular level. Plant Physiol 127: 1346–135
  • Berjak P, Farrant JM, Pammenter NW (2007) Seed desiccation-tolerance mechanisms. In: Jenks MA, Wood AJ: Plant desiccation tolerance. Black Well Publishing, USA, pp 151-192
  • Buitink J, Hoekstra FA, Leprince O (2002) Biochemistry and biophysics of tolerance systems. In Black M and Pritchard HW (ed) Desiccation and survival in plants: drying without dying. CABI publishing, Pp 293-318
  • Dinakar C, Djilianov D, Bartels D (2012) Photosynhtesis in desiccation tolerant plants: energy metabolism and antioxidative stress defense. Plant Sci 182: 29-41
  • Farrant JM (2000) A comparison of mechanisms of desiccation-tolerance among three angiosperm resurrection plant species. Plant Ecol 151: 29-39
  • Farrant JM, Cooper K, Kruger LA, Sherwin HW (1999) The effect of drying rate on the survival of three desiccation-tolerant angiosperm species. Ann Bot 84: 371-379
  • Fernández-Marín B, Balaguer L, Esteban R, Becerril JM, García-Plazaola JI (2009) Dark induction of the photoprotective xanthophyll cycle in response to dehydration. J Plant Physiol 166: 1734-1744
  • Fernández-Marín B, Becerril JM, García-Plazaola JI (2010) Unravelling the roles of desiccation-induced xanthophyll cycle activity in darkness: a case study in Lobaria pulmonaria. Planta 231:1335–1342
  • Fernández-Marín B, Kraner I, San Sebastián M, Artetxe U, Laza JM, Vilas JL, Pritchard HW, Najadaran J, Míguez F, Becerril JM, García-Plazaola JI (2013) Evidence for the absence of enzymatic reactions in the glassy state. A case study of xanthopyll cycle pigments in the desiccation tolerant moss Syntrichia ruralis. J Exp Bot 64: 3033-3043
  • Fernández-Marín B, Míguez F, Becerril JM, García-Plazaola JI (2011) Dehydration-mediated activation of the xanthophyll cycle in darkness: is it related to desiccation tolerance? Planta 243: 579-588
  • Franks F, Hatley RHM, Mathias SF (1991) Materials science and the production of shelf-stable biologicals. Bio Pharm 4: 38-42
  • Gaff DF (1971) Desiccation-tolerant flowering plants in Southern Africa. Science 3:1033-1034.
  • Gaff DF (1997) Response of desiccation tolerant “resurrection” plants to water stress. In Mechanims of environmental stress resistance in plants, ed. R.K. Basra, 43-58. London: Harwood Academic Publishers.
  • Gaff DF, Oliver MJ (2013) The evolution of desiccation tolerance in angiosperm plants: a rare yet common phenomenon. FunctPlantBiol 40:315-328.
  • Heber U, Lange OL, Shuvalov VA (2006) Conservation and dissipation of light energy as complementary processes: homoiohydric and poikilohydric autotrophs. J Exp Bot 57: 1211-1223
  • Hoekstra FA, Golovina EA, Buitink J (2001) Mechanisms of plant desiccation tolerance. Trends Plant Sci 6: 1360-1385
  • Iljin WS (1957) Drought-resistance in plants and physiological processes. Annu Rev Plan Physiol 3: 341-363
  • Jones L, McQueen-Mason S (2004) A role of expansins in dehydration and rehydration of the resurrection plant Craterostigma plantagineum. FEBS Lett 559: 61-65
  • Keilin D (1959) The problem of anabiosis or latent life: history and current concept. Proc R Soc Lond B Biol Sci 150: 149-151
  • Kranner I, Beckett RP, Hochman A, Nash TH (2008) Desiccation-tolerance in lichens: a review. Bryologist 111:576-593.
  • Kranner I, Beckett RP, Wornik S, Zorn M, Pfeifhofer W (2002) Revival of a resurrection plant correlates with its antioxidant status. Plant J 31: 13-24
  • Kranner I, Cram WJ, Zorn M, Wornik S, Yoshimura I, Stabentheiner E, Pfeifhofer HW (2005) Antioxidants and photoprotection in a lichen as compared with its isolated symbiotic partners. Proc Natl Acad Sci USA 102:3141–3146
  • Lebkuecher JG, Eickmeier WG (1991) Reduced photoinhibition with stem curling in the resurrection plant Selaginella lepidophylla. Oecologia 88: 597-604
  • Leprince O, Buitink J (2007) The glassy state in dry seeds and pollen. In: Jenks MA, Wood AJ (ed) Plant desiccation tolerance. Black Well Publishing, USA, pp 193-214
  • Leprince O, Hoekstra FA (1998). The responses of cytochrome redox state and energy metabolism to dehydration support a role for cytoplasmic viscosity in desiccation tolerance. Plant Phys 118: 1253-1264
  • Mariaux JB, Bockel C, Salamini F, Bartels D (1998) Desiccation- and abscisic acid- responsive genes encoding major intrinsic proteins (MIPs) from the resurrection plant Craterostigma plantagineum. Plant Mol Biol 38: 1089-1099
  • Mayaba N, Minibayeva F, Bechett RP (2002) An oxidative burst of hydrogen peroxide during rehydration following desiccation in the moss Atrichum androgynum. New Phytol 155: 275-283
  • Minibayeva F, Beckett RP (2001) High rates of extracellular superoxide production in bryophytes and lichens, and an oxidative burst in response to rehydration following desiccation. New Phytol 152: 333-341
  • Moore JP, Vicré-Gibouin M, Farrant JM, Driouich A (2008) Adaptations of higher plant cell walls to water loss: drought vs desiccation. Physiol Plant 134: 237-245
  • Nabe H, Funabiki R, Kashino Y, Koike H, Satoh K (2007) Responses to desiccation stress in bryophytes and important role of dithiothreitol-insensitive non-photochemical quenching against photoinhibition in dehydrated states. Plant Cell Physiol 48: 1548-1557
  • Oliver MJ, Tuba Z, Mishler BD (2000) The evolution of vegetative desiccation tolerance in land plants. Plant Ecol 151:85-100
  • Phillips JR, Fischer E, Baron M, van den Dries N, Facchinelli F, Kutzer M, Rahmanzadeh R, Remus D, Bartels D (2008) Lindernia brevidens: a novel desiccation-tolerant vascular plant, endemic to ancient tropical rainforests. Plan J 54: 938-948
  • Proctor MCF (2000) The bryophyte paradox: Tolerance of desiccation, evasion of drought. Plant Ecol 151: 41-49
  • Proctor MCF, Pence VC (2002) Vegetative tissues: bryophytes, vascular resurrection plants and vegetative propagules. In Black M and Pritchard HW (Eds) Desiccation and survival in plants: drying without dying, CABI publishing, Pp 207-237
  • Proctor MCF, Tuba Z (2002) Poikilohydry and homoihydry: antithesis or spectrum of possibilities?. NewPhytol 156: 327-349.
  • Rascio N, La Rocca N (2005) Resurrection plants: the puzzle of surviving extreme vegetative desiccation. Plant Sci 24: 209-225
  • Sherwin HW, Farrant JM (1996) Differences in rehydration of three desiccation-tolerant angiosperm species. Ann Bot 78: 703-710
  • Tuba Z, Proctor MCF, Csintalan Z (1998) Ecophysiological responses of homoiochlorophyllous and poikilochlorophyllous desiccation-tolerant plants: A comparison and an ecological perspective. Plant Growth Reg 24: 211-217
  • Vander Willingen C, Pammenter NW, Mundree SG, Farrant JM (2004) Mechanical stabilization of desiccated vegetative tissues of the resurrection grass Eragrostis nindensis: does a TIP 3;1 and/or compartmentalization of subcellular components and metabolites play a role?. J Exp Bot 55: 651-661
  • Vertucci CW, Farrant JM (1995) Acquisition and loss of desiccation tolerance. In: Kigel L, Galili (ed) Seed development and germination, Marcel Dekker Press Inc
  • Vicre M, Lerouxel O, Farrant J, Lerouge P, Driouich A (2004) Composition and desiccation-induced alterations of the cell wall in the resurrection plant Craterostigma wilmsii. Physiol Plant 120: 229-239
  • Wood AJ (2007) The nature and distribution of vegetative desiccation-tolerance in hornworts, liverworts and mosses. Bryologist 110: 163-176
  • Xiao L, Yang G, Zhang L, et al. (2015) The resurrection genome of Boea hygrometrica: a blueprint for survival of dehydration. Proc Natl Acad Sci USA 112: 5833-5837
  • Yobi A, Wone BMW, Xu W, Alexander DC, Guo L, Ryals JA, Oliver MJ, Cushman JC. Metabolomic profiling in Selaginella lepidopylla at various hydration states provides new insights into the mechanistic basis of desiccation tolerance. Molecular Plant 6: 369-385

Referencias[editar]

  1. ↑ «Vertucci & Farrant 1995». 
  2. ↑ «Gaff 1971». 
  3. ↑ «Gaff & Oliver 2013». 
  4. ↑ «Gaff 1997». 
  5. ↑ a b «Rascio & La Rocca 2005.». 
  6. ↑ «Proctor 2000.». 
  7. ↑ «Tuba et al. 1998.». 
  8. ↑ «Procotor & Tuba 2002.». 
  9. ↑ «Kranner et al. 2008.». 
  10. ↑ «Proctor & Pence 2002». 
  11. ↑ «Alpert 2006». 
  12. ↑ «Wood 2007». 
  13. ↑ a b «Alpert 2000.». 
  14. ↑ a b c «Oliver et al. 2000.». 
  15. ↑ «Philips et al. 2008». 
  16. ↑ «Proctor & Tuba 2002». 
  17. ↑ «Sherwin & Farrant 1996». 
  18. ↑ a b «Hoekstra et al. 2001». 
  19. ↑ «Dinakar et al. 2012». 
  20. ↑ «Lebkuecher and Eickmeier 1991». 
  21. ↑ «Farrant et al. 1999». 
  22. ↑ «Bartak et al. 2006». 
  23. ↑ a b «Jones & Mc Queen-Mason 2004». 
  24. ↑ a b «Moore et al. 2008». 
  25. ↑ «Vicre et al. 2004». 
  26. ↑ «Farrant 2000». 
  27. ↑ «Vander Willeng et al. 2004». 
  28. ↑ «Iljin 1957». 
  29. ↑ «Leprince & Hoekstra 1998». 
  30. ↑ «Buitnik et al. 2002». 
  31. ↑ a b «Leprince & Buitnik 2007». 
  32. ↑ «Angell 1998». 
  33. ↑ «Fernández-Marín et al. 2013». 
  34. ↑ «Berjak et al. 2007». 
  35. ↑ «Nabe et al. 2007». 
  36. ↑ «Heber et al. 2006». 
  37. ↑ a b c «Kranner et al. 2002». 
  38. ↑ «Augusti et al. 2001». 
  39. ↑ «Fernández-Marín et al. 2009». 
  40. ↑ «Fernández-Marín et al. 2010». 
  41. ↑ «Fernández-Marín et al. 2011». 
  42. ↑ «Mayaba et al. 2002». 
  43. ↑ «Kranner et al. 2005». 
  44. ↑ «Minibayeva & Beckett 2001». 
  45. ↑ «Mariaux et al. 1998». 
  46. ↑ «Vander Willingen et al. 2004». 
  47. ↑ «Xiao et al. 2015». 
  48. ↑ «Bartels & Salamini 2001». 
  49. ↑ «Yobi et al. 2013». 
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