Test de dispersión de la cromatina espermática

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Este aviso fue puesto el 16 de julio de 2011.


El test de dispersión de la cromatina espermática: SCD (Sperm Chromatin Dispersion por sus siglas en inglés) es una técnica empleada para identificar y evaluar los espermatozoides que presentan daño en su ADN. Es decir, permite identificar aquellos espermatozoides que tienen su material genético (ADN) dañado y así diferenciarlos de los que no lo tienen.

La integridad del material genético del espermatozoide, al igual que su concentración, motilidad y morfología, es un parámetro adicional que ayuda a evaluar la calidad de una muestra seminal. La presencia de roturas en la cadena del ADN del espermatozoide se conoce como “fragmentación del ADN espermático”. Cuando esto ocurre, las posibilidades de obtener un embarazo a término son menores.

Existen diversas causas que provocan daño en el ADN espermático. Entre las principales están: fallo en la reparación de nicks en el ADN, ataque de ROS (especies reactivas de oxígeno) al ADN y escasez de puentes disulfuro debido a un empaquetamiento alterado del ADN.

Este test permite establecer la proporción de espermatozoides con ADN fragmentado en el total de muestra analizada (índice de fragmentación; IF: proporción de espermatozoides con ADN fragmentado con respecto al total de espermatozoides analizados). El cálculo del IF en los pacientes es una información valiosa para seleccionar el método de reproducción asistida más eficaz para cada uno de ellos.

Se estima que utilizando métodos de reproducción normales, un porcentaje de espermatozoides con ADN fragmentado superior al 30 % reduce o en algunos casos elimina la posibilidad de conseguir en embarazo a término (Evenson 2008).[1]​ En estos casos, se aconseja el empleo de la técnica de fertilización in vitro (FIV) o la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) donde se requiere una selección eficaz del espermatozoide que se utilizará para fertilizar el oocito. Las parejas que presentan infertilidad y con porcentajes menores a un 30% de espermatozoides con ADN fragmentado, se les aconseja el empleo de la técnica de inseminación intrauterina (IUI), que es la más natural, fácil y económica, a diferencia de las anteriormente mencionadas. Desde esta perspectiva, el test SCD complementa el estudio de la calidad seminal y posibilita la selección directa del mejor método de reproducción asistida cuando no existe factor femenino que condicione la fertilidad y evita el realizar ciclos con posibilidades de fallo de inseminación o bien de correcto desarrollo embrionario.

Base de la técnica SCD[editar]

La base técnica de la prueba de SCD se basa en dos fenómenos: el primero es que las hebras de ADN que contienen roturas en su ADN son más fáciles de ser desnaturalizadas utilizando esos puntos de rotura. De hecho, los extremos de las roturas, que pueden ser de cadena sencilla o de cadena doble, son los orígenes de la desnaturalización cuando estos se enfrentan a un tratamiento de carácter ácido. El segundo fenómeno es que los bucles compactados de fibra de cromatina nuclear, compuestas de ADN y proteínas, se desempaquetan cuando se extraen proteínas nucleares. Este proceso de relajación de los bucles de cromatina tras un tratamiento desproteinizante da lugar a halos periféricos de cromatina/ADN que emanan del residuo nuclear central, según el modelo propuesto por Cook y Brazell en 1980.[2]​

Imagen al microscopio óptico de espermatozoides sometidos a desnaturalización con una solución de lisis

La prueba de SCD ha sido adaptada para visualizar el daño en los espermatozoides humanos y la metodología consta de tres pasos principales:

  1. Inclusión de los espermatozoides en una matriz inerte semisólida, tipo agar, sobre un portaobjetos.
  2. Incubación de la muestra en un medio ácido para provocar la desnaturalización del ADN,
  3. Tratamiento de los espermatozoides sometidos a desnaturalización con una solución de lisis para eliminar de forma controlada las proteínas nucleares. Las preparaciones obtenidas de esta forma, se fijan y deshidratan en una serie de alcoholes (etanol al 70%, 90% y 100%) para proceder posteriormente a una tinción que se observa bajo el microscopio óptico tanto de campo claro (Figura a) como de fluorescencia (Figura b).

Una vez realizada la técnica, podemos observar tres tipos de espermatozoides:

  • No fragmentados. En ellos se forma un halo característico de dispersión de los bucles de ADN en torno a un núcleo denso central.
  • Fragmentados. Los halos no aparecen o bien son de un tamaño muy reducido.
  • Degradados. Espermatozoides sin halo, con núcleo desorganizado.

Este comportamiento diferencial de la cromatina es la base del test SCD. La fácil y clara discriminación entre los tres tipos de espermatozoides permite, en algunos casos, establecer un posible diagnóstico clínico sobre algunas patologías relacionadas con el aparato reproductor masculino. Así, la presencia de niveles altos de espermatozoides degradados se encuentra asociada a un síndrome, bastante común y muchas veces no diagnosticado, como es el varicocele (Enciso et al. 2006,[3]​ García Peiró et al. 2011).[4]​

La técnica de SCD se puede usar también para el estudio de muestras seminales de otros mamíferos, peces o insectos, pero en todos los casos los protocolos de desproteinización han de ser adaptados a cada especie, dado que las proteínas que intervienen en el empaquetamiento del ADN tienen diferente naturaleza. (Johnston et al 2009,[5]​ López-Fernández et al 2009,[6]​ Zee et al. 2009,[7]​ López-Fernández et al. 2010,[8]​ Pérez-Llano et al. 2010,[9]​ González-Marín et al. 2011).[10]​

Aplicaciones de la técnica SCD[editar]

  • Análisis de la frecuencia de espermatozoides con ADN fragmentado. (Fernández et al.2005,[11]​ Fernández et al.2011,[12]​ García Peiró et al. 2011[4]​)
  • Análisis simultáneo de daño en el ADN y presencia de aneuploidías. (Muriel et al, 2007)[13]​
  • Análisis simultáneo de daño en el ADN y de 8-oxoguanosina, provocados por estrés oxidativo. (Santiso et al. 2010)[14]​
  • Análisis simultáneo de daño en el ADN y metilación de residuos de citosina.
  • Análisis simultáneo de daño en el ADN y cambios en la matriz proteica del espermatozoide. (de la Torre et al. 2007)[15]​
  • Técnica de elección en situaciones de oligospermia severa.
  • Selección de donantes de semen (Gosálvez et al. 2009)[16]​
  • Control de calidad de las técnicas de laboratorio de andrología.
  • Diagnóstico y seguimiento de varicocele. (Enciso et al. 2006, García Peiró et al. 2011)[4]​
  • Evaluación del impacto de infecciones bacterianas del tracto genitourinario. (Gallegos et al. 2008,[17]​ González-Marín et al. 2011)[10]​
  • Evaluación del efecto de agentes tóxicos: tabaco, pesticidas, etc. (Viloria et al. 2007)[18]​
  • Estudios dinámicos de la evolución de la pérdida de calidad del ADN espermático. (López-Fernández et al. 2007,[19]​ 2010,[8]​ García Peiró et al. 2011)[5]​

Comparativa con otras técnicas[editar]

Los resultados del test SCD se correlacionan con los obtenidos con otro tipo de técnicas para analizar la fragmentación del ADN en el espermatozoide. Entre ellas, las más comunes son el TUNEL (Terminal deoxynucleotidyl transferase -TdT-mediated nick-end labelling), el Sperm Chromatin Structure Assay (SCSA) y el ensayo de Cometa (Chohan et al. 2006,[20]​ García-Macías et al. 2007,[21]​ Vélez de la Calle et al. 2008,[22]​ Zhang et al. 2010).[23]​

Las ventajas e inconvenientes de cada una ella de ellas se recogen en la tabla 1.

TÉCNICA VENTAJAS INCONVENIENTES
TUNEL - Requiere pocos espermatozoides

- Evaluación mediante microscopía de fluorescencia o de campo claro, o mediante citometría

- Disponible en kits

- Protocolos variables con resultados irregulares

- Muy laborioso

Ensayo COMETA - Requiere pocos espermatozoides

- Evaluación mediante microscopía de fluorescencia

- Protocolos variables, con resultados irregulares

- Muy laborioso

- Equipamiento complejo

- Requiere software de análisis complicado

- Preparaciones no permanentes

SCSA - Larga experiencia

- Correlaciones clínicas bien establecidas

- Análisis mediante citometría

- Requiere equipamiento costoso

- Resultado sensible a pequeñas variaciones externas

- Requiere muchos espermatozoides

- Preparaciones no permanentes

SCD - Requiere pocos espermatozoides

- Requiere equipamiento muy básico

- Simple y rápido de ejecución

- Evaluación mediante microscopía de campo claro o de fluorescencia, con posibilidad de análisis extensivo automatizado

- Discriminación de diferentes categorías de daño del ADN, especialmente el nivel “degradado”, no reconocible por otros procedimientos

- Preparaciones permanentes, revisables

- Gran versatilidad: posibilidad de estudios simultáneos correlativos de anomalías cromosómicas, 5-metilcitosina, 8-oxoguanina y matriz nuclear residual

- Protocolo único, disponible en kit

Referencias[editar]

  1. ↑ Evenson, Donald P.; Wixon, Regina (2008-10). «Data analysis of two in vivo fertility studies using Sperm Chromatin Structure Assay-derived DNA fragmentation index vs. pregnancy outcome». Fertility and Sterility 90 (4): 1229-1231. ISSN 1556-5653. PMID 18191126. doi:10.1016/j.fertnstert.2007.10.066. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  2. ↑ Cook, P. R.; Brazell, I. A. (11 de julio de 1980). «Mapping sequences in loops of nuclear DNA by their progressive detachment from the nuclear cage». Nucleic Acids Research 8 (13): 2895-2906. ISSN 0305-1048. PMID 7433096. doi:10.1093/nar/8.13.2895. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  3. ↑ Enciso, María; Muriel, Lourdes; Fernández, José Luis; Goyanes, Vicente; Segrelles, Enrique; Marcos, Mercedes; Montejo, Juan Manuel; Ardoy, Manolo et al. (2006-01). «Infertile men with varicocele show a high relative proportion of sperm cells with intense nuclear damage level, evidenced by the sperm chromatin dispersion test». Journal of Andrology 27 (1): 106-111. ISSN 0196-3635. PMID 16400086. doi:10.2164/jandrol.05115. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  4. ↑ a b c García-Peiró, A.; Oliver-Bonet, M.; Navarro, J.; Abad, C.; Guitart, M.; Amengual, M. J.; Gosálvez, J.; Benet, J. (2011-12). «Dynamics of sperm DNA fragmentation in patients carrying structurally rearranged chromosomes». International Journal of Andrology 34 (6 Pt 2): e546-553. ISSN 1365-2605. PMID 21535010. doi:10.1111/j.1365-2605.2011.01153.x. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  5. ↑ a b Johnston, S. D.; López-Fernández, C.; Gosálbez, A.; Holt, W. V.; Gosálvez, J. (2009). «Directional mapping of DNA nicking in ejaculated and cauda epididymidal spermatozoa of the short-beaked echidna (Tachyglossus aculeatus: Monotremata)». Reproduction, Fertility, and Development 21 (8): 1008-1014. ISSN 1031-3613. PMID 19874725. doi:10.1071/RD09079. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  6. ↑ López-Fernández, Carmen; Gage, Matthew J. G.; Arroyo, Francisca; Gosálbez, Altea; Larrán, Ana M.; Fernández, José L.; Gosálvez, Jaime (2009-08). «Rapid rates of sperm DNA damage after activation in tench (Tinca tinca: Teleostei, Cyprinidae) measured using a sperm chromatin dispersion test». Reproduction (Cambridge, England) 138 (2): 257-266. ISSN 1741-7899. PMID 19494044. doi:10.1530/REP-09-0105. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  7. ↑ Zee, Yeng Peng; López-Fernández, Carmen; Arroyo, F.; Johnston, Stephen D.; Holt, William V.; Gosalvez, Jaime (2009-08). «Evidence that single-stranded DNA breaks are a normal feature of koala sperm chromatin, while double-stranded DNA breaks are indicative of DNA damage». Reproduction (Cambridge, England) 138 (2): 267-278. ISSN 1741-7899. PMID 19494045. doi:10.1530/REP-09-0021. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  8. ↑ a b López-Fernández, C.; Johnston, S. D.; Fernández, J. L.; Wilson, R. J.; Gosálvez, J. (2010-11). «Fragmentation dynamics of frozen-thawed ram sperm DNA is modulated by sperm concentration». Theriogenology 74 (8): 1362-1370. ISSN 1879-3231. PMID 20688370. doi:10.1016/j.theriogenology.2010.06.006. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  9. ↑ Pérez-Llano, B.; López-Fernández, C.; García-Casado, P.; Arroyo, F.; Gosalbez, A.; Sala, R.; Gosálvez, J. (2010-06). «Dynamics of sperm DNA fragmentation in the swine: ejaculate and temperature effects». Animal Reproduction Science 119 (3-4): 235-243. ISSN 1873-2232. PMID 20149563. doi:10.1016/j.anireprosci.2010.01.002. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  10. ↑ a b González-Marín, C.; Roy, R.; López-Fernández, C.; Diez, B.; Carabaño, M. J.; Fernández, J. L.; Kjelland, M. E.; Moreno, J. F. et al. (2011-02). «Bacteria in bovine semen can increase sperm DNA fragmentation rates: a kinetic experimental approach». Animal Reproduction Science 123 (3-4): 139-148. ISSN 1873-2232. PMID 21168290. doi:10.1016/j.anireprosci.2010.11.014. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  11. ↑ Fernández, José Luis; Muriel, Lourdes; Goyanes, Vicente; Segrelles, Enrique; Gosálvez, Jaime; Enciso, María; LaFromboise, Marie; De Jonge, Christopher (2005-10). «Halosperm is an easy, available, and cost-effective alternative for determining sperm DNA fragmentation». Fertility and Sterility 84 (4): 860. ISSN 1556-5653. PMID 16213835. doi:10.1016/j.fertnstert.2005.05.013. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  12. ↑ Fernández, José Luis; Cajigal, Dioleyda; López-Fernández, Carmen; Gosálvez, Jaime (2011). «Assessing sperm DNA fragmentation with the sperm chromatin dispersion test». Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.) 682: 291-301. ISSN 1940-6029. PMID 21057936. doi:10.1007/978-1-60327-409-8_21. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  13. ↑ Muriel, Lourdes; Goyanes, Vicente; Segrelles, Enrique; Gosálvez, Jaime; Alvarez, Juan G.; Fernández, José Luis (2007-01). «Increased aneuploidy rate in sperm with fragmented DNA as determined by the sperm chromatin dispersion (SCD) test and FISH analysis». Journal of Andrology 28 (1): 38-49. ISSN 0196-3635. PMID 16899813. doi:10.2164/jandrol.106.000067. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  14. ↑ Sobue, G.; Kachi, T.; Yamada, T.; Hashizume, Y.; Mitsuma, T. (1990-04). «[Spatial distribution of the peripheral nerve lesion in polyarteritis nodosa]». Rinsho Shinkeigaku = Clinical Neurology 30 (4): 388-395. ISSN 0009-918X. PMID 1974832. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  15. ↑ de la Torre, Joaquina; López-Fernández, Carmen; Pita, Miguel; Fernández, Jose Luis; Johnston, Steve D.; Gosálvez, Jaime (2007-07). «Simultaneous observation of DNA fragmentation and protein loss in the boar spermatozoon following application of the sperm chromatin dispersion (SCD) test». Journal of Andrology 28 (4): 533-540. ISSN 0196-3635. PMID 17287454. doi:10.2164/jandrol.106.002246. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  16. ↑ Gosálvez, Jaime; Cortés-Gutierez, Elva; López-Fernández, Carmen; Fernández, José Luís; Caballero, Pedro; Nuñez, Rocio (2009-07). «Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation dynamics in fertile donors». Fertility and Sterility 92 (1): 170-173. ISSN 1556-5653. PMID 18692792. doi:10.1016/j.fertnstert.2008.05.068. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  17. ↑ Gallegos, Guadalupe; Ramos, Benito; Santiso, Rebeca; Goyanes, Vicente; Gosálvez, Jaime; Fernández, José Luis (2008-08). «Sperm DNA fragmentation in infertile men with genitourinary infection by Chlamydia trachomatis and Mycoplasma». Fertility and Sterility 90 (2): 328-334. ISSN 1556-5653. PMID 17953955. doi:10.1016/j.fertnstert.2007.06.035. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  18. ↑ Cabral, Zuleide Aparecida Felix; de Medeiros, Sebastião Freitas (2007-12). «Follicular growth pattern in normal-cycling Brazilian adolescents». Fertility and Sterility 88 (6): 1625-1631. ISSN 1556-5653. PMID 17482608. doi:10.1016/j.fertnstert.2007.01.127. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  19. ↑ López-Fernández, C.; Crespo, F.; Arroyo, F.; Fernández, J. L.; Arana, P.; Johnston, S. D.; Gosálvez, J. (2007-12). «Dynamics of sperm DNA fragmentation in domestic animals II. The stallion». Theriogenology 68 (9): 1240-1250. ISSN 0093-691X. PMID 17919715. doi:10.1016/j.theriogenology.2007.08.029. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  20. ↑ Chohan, Kazim R.; Griffin, Jeanine T.; Lafromboise, Marie; De Jonge, Christopher J.; Carrell, Douglas T. (2006-01). «Comparison of chromatin assays for DNA fragmentation evaluation in human sperm». Journal of Andrology 27 (1): 53-59. ISSN 0196-3635. PMID 16400078. doi:10.2164/jandrol.05068. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  21. ↑ García-Macías, Vanesa; de Paz, Paulino; Martinez-Pastor, Felipe; Alvarez, Mercedes; Gomes-Alves, Susana; Bernardo, Jana; Anel, Enrique; Anel, Luis (2007-04). «DNA fragmentation assessment by flow cytometry and Sperm-Bos-Halomax (bright-field microscopy and fluorescence microscopy) in bull sperm». International Journal of Andrology 30 (2): 88-98. ISSN 0105-6263. PMID 17166172. doi:10.1111/j.1365-2605.2006.00723.x. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  22. ↑ Velez de la Calle, Juan Felipe; Muller, Audrey; Walschaerts, Marie; Clavere, Jean Louis; Jimenez, Clément; Wittemer, Christiane; Thonneau, Patrick (2008-11). «Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation as assessed by the sperm chromatin dispersion test in assisted reproductive technology programs: results of a large prospective multicenter study». Fertility and Sterility 90 (5): 1792-1799. ISSN 1556-5653. PMID 18166175. doi:10.1016/j.fertnstert.2007.09.021. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 
  23. ↑ Zhang, Li-hong; Qiu, Yi; Wang, Ke-hua; Wang, Qiuju; Tao, Guozhen; Wang, Lei-guang (2010-08). «Measurement of sperm DNA fragmentation using bright-field microscopy: comparison between sperm chromatin dispersion test and terminal uridine nick-end labeling assay». Fertility and Sterility 94 (3): 1027-1032. ISSN 1556-5653. PMID 19505686. doi:10.1016/j.fertnstert.2009.04.034. Consultado el 15 de septiembre de 2020. 

• Patentes EP1710320, US2007281298. Patentes pendientes en otros países.

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