Transketolase-like-1

De Wikipedia, la enciclopedia libre

Transketolase-like-1 (TKTL1) es un gen estrechamente relacionado con el gen de la transketolasa (TKT). Surgió en los mamíferos en el curso de la evolución y, según los últimos resultados de la investigación, se considera uno de los genes clave que distingue a los humanos modernos (homo sapiens) de los neandertales.[1][2][3]

Las proteínas formadas por los dos genes de la transketolasa forman un heterodímero (TKTL1-TKT). Una vez exprimida, la proteína TKTL1 desplaza a una proteína TKT del homodímero TKT-TKT, dando lugar a la formación de un heterodímero TKTL1-TKT. Este heterodímero es enzimáticamente muy diferente del homodímero de la transketolasa (TKT-TKT), ya que el heterodímero conduce a un aumento significativo de la ribosa-5-fosfato en las células[4]​. TKTL1 también permite la formación de acetil-CoA[5]​, un importante bloque de construcción para la síntesis de lípidos y esteroides. El gen TKTL1 fue descubierto a principios de los años 90 por Johannes F. Coy como miembro del proyecto de investigación de Análisis del Genoma Molecular en el DKFZ de Heidelberg,[6]​ que se publicó por primera vez en 1996.[1]

Tareas[editar]

Los componentes básicos ribosa-5-fosfato y acetil-CoA formados por TKTL1 proporcionan elementos esenciales para la formación de nuevas células. TKTL1 regula el ciclo celular y permite que se lleve a cabo proporcionando el componente básico ribosa, necesario para la síntesis de ADN.[7]​ La formación de ribosa también proporciona el componente básico para reparar los daños en el ADN, de modo que la activación de TKTL1 permite a las células cancerosas reparar mejor los daños en el ADN causados por la quimioterapia o la radioterapia y, por tanto, hacerse resistentes a estas terapias.[8][9][10][11]

TKTL1 también permite la supervivencia en ausencia de oxígeno (hipoxia). Este sistema de protección se activa, por ejemplo, en caso de rotura de un vaso sanguíneo y de la consiguiente falta de oxígeno. TKTL1 controla este programa de hipoxia, que permite a la célula sobrevivir sin oxígeno, mediante la fermentación de la glucosa en ácido láctico.[12][13]​ El ácido formado permite la degradación de la matriz y la remodelación del tejido a base de ácido[14]​, así como la inhibición de las células inmunitarias que eliminan las células tumorales.[15][16]​ Al mismo tiempo, TKTL1 y el ácido láctico controlan la formación de nuevos vasos sanguíneos, reoxigenando así el tejido sano o un tumor.[17][18][11]

Significado[editar]

Los autores de un estudio histórico publicado en Nature Communications en 2019 pudieron demostrar que el ciclo celular se controla de forma diferente a lo que se suponía.[7]​ La visión anterior suponía que el consumo de ribosa-5-fosfato que comienza con el inicio del ciclo celular desencadena la correspondiente posproducción para que la duplicación celular deseada pueda llevarse a cabo (teoría del tirón: "el consumo desencadena la producción").

Los nuevos datos demuestran que TKTL1 se expresa primero, seguido de la formación del heterodímero de TKTL1-TKT, que aumenta significativamente la concentración de ribosa-5-fosfato, desencadenando así el ciclo celular. El aumento de la concentración de ribosa-5-fosfato, mediado por TKTL1, empuja a la célula hacia el ciclo celular (efecto de empuje).

Por un lado, este metabolismo constituye la base para la nueva formación de células sanas, pero por otro lado, también conduce a la nueva formación de células no deseadas, como las cancerosas. TKTL1 desempeña un papel decisivo en la malignidad de las células cancerosas, sin importar el tipo de cáncer.[19]​ Tanto la tasa de proliferación[20]​ como la capacidad de diseminarse en el cuerpo y formar metástasis dependen de TKTL1.[21][20][22]​ Además, TKTL1 también media en la protección de las células cancerosas contra los ataques del propio sistema inmunitario del organismo, por ejemplo, bloqueando las células asesinas a través del ácido láctico formado (detención del ácido) e impidiendo así que lleguen a las células cancerosas y las eliminen[15][15][16]​ Adicionalmente, TKTL1 suprime también sistemáticamente el sistema inmunitario, de modo que los tumores ya no son eliminados por el sistema inmunitario.[23][24]

Un equipo de investigación de la ciudad de Dresde dirigido por el Premio Nobel de Medicina Svante Pääbo y Wieland B. Huttner lograron en 2022 demostrar que los humanos modernos producen más neuronas en el lóbulo frontal durante el desarrollo del cerebro que los neandertales, debido a un cambio en un solo aminoácido de la proteína TKTL1.[3][25]

En 2012, Svante Pääbo et al. realizaron un estudio para investigar cómo la expresión de los genes en el cerebro de los animales domesticados difiere de la de los animales salvajes. Entre otras cosas, los investigadores descubrieron que TKTL1 es el gen con la diferencia de expresión más significativa entre perros domesticados y lobos salvajes: la activación del gen es 47 veces mayor en perros que en lobos.[26]

Diagnóstico de cáncer[editar]

Dado que todas las formas de cáncer se benefician de los factores de malignidad mediados por TKTL1, como el aumento de la proliferación, el crecimiento independiente del oxígeno, la invasión/metástasis y la supresión del sistema inmunitario, la detección de la proteína TKTL1 ofrece la posibilidad de detectar el cáncer o las lesiones premalignas (lesiones precancerosas) mediante una muestra de sangre.

En un estudio publicado en 2020 por la Universidad de Tubinga, se realizó la detección de TKTL1 y otra proteína (DNaseX/Apo10) en los fagocitos en la sangre y se demostró que puede utilizarse para detectar el cáncer colorrectal, el cáncer de vías biliares y el cáncer de páncreas de forma excelente y mejor que con los métodos de prueba convencionales (marcadores tumorales).[27]​  

En un estudio realizado en 2022 bajo la dirección del Hospital Universitario de Eppendorf, se determinaron las proteínas TKTL1 y DNaseX/Apo10 a partir de la sangre de más de 5.000 sujetos de prueba considerados sanos y con edades comprendidas entre los 50 y los 70 años (Burg et al., 2022). En el 82 % de los sujetos con resultados anormales en los análisis de sangre, que fueron examinados posteriormente con métodos de imagen como la resonancia magnética y la PET/TC, fue posible detectar un cáncer que había sido indetectable, asintomático o precanceroso hasta el momento del estudio.

Estudios realizados en la Universidad de Tubinga sobre la detección del cáncer (rabdomiosarcoma y neuroblastoma) en bebés, niños y adultos jóvenes pudieron demostrar que la detección de TKTL1 y de otra proteína (DNasaX/Apo10) en las células de barrido de la sangre permite detectar de forma muy sensible y específica la presencia de estos dos tipos de cáncer (Urla et al., 2022)[28]​ Los resultados de este estudio sólo están disponibles en alemán.

Métodos de detección[editar]

Actualmente, existen tres métodos laboratoriales para la detección de TKTL1. Se trata de la determinación directa de TKTL1 a partir de la sangre, el examen inmunohistoquímico del tejido tumoral para la evaluación del riesgo, que actualmente se ofrece exclusivamente en el departamento de patología de Bad Berka en los países germanos, y la medición de TKTL1 en los macrófagos mediante la tecnología EDIM, que se aplica en la detección combinada de TKTL1 y DNaseX (apo10) en el análisis de sangre PanTum Detect.

Importancia clínica de TKTL1 en el ámbito del cáncer[editar]

La proteína TKTL1 se detectó por primera vez el año 2005 en células sanas y en células tumorales mediante inmunohistoquímica.[29]​ Poco después, se demostró que la proteína TKTL1 aumentaba en los tumores en comparación con el tejido sano y se identificó a los pacientes con cáncer colorrectal y de vejiga que presentaban una muerte más rápida.[19]​ Este estudio también discutió el papel de TKTL1 en la fermentación de la glucosa a ácido láctico a pesar de la presencia de oxígeno, que fue descrita por primera vez por el ganador del Premio Nobel Otto Heinrich Warburg y que denominó glucólisis aeróbica. El término de glucólisis aeróbica acuñado por Warburg, que creó para describir la fermentación anaeróbica pero realizada en condiciones aeróbicas, es decir, a pesar de la presencia de oxígeno, dio lugar a grandes malentendidos. En honor a Warburg, la fermentación de la glucosa en ácido láctico se denominó Efecto Warburg. En el estudio de Langbein et al. en 2006, se reinterpretó el Efecto Warburg y se discutió la importancia de este metabolismo de fermentación para el crecimiento destructivo invasivo y la metástasis de las células cancerosas. En un estudio posterior realizado por Langbein, se pudo demostrar el papel de TKTL1 y el cambio de la liberación de energía a la fermentación mediado por ella para la metástasis de los carcinomas renales.[30]​ Aquí se pudo identificar la importancia clínica de la expresión de TKTL1 en los estadios tempranos de los tumores, ya que se detectaron tumores aparentemente bastante benignos (estadio T1) por TKTL1, que llevaron a la muerte de los pacientes de cáncer renal al poco tiempo.

La importancia clínica de TKTL1 como marcador en los tumores para una muerte más rápida (mal pronóstico) de los pacientes con cáncer se ha podido demostrar en un gran número de estudios. Estudios en orden cronológico: 2006: Cáncer de vejiga y colorrectal[19]​, 2007: Cáncer de ovario[31]​, 2009: Nefroblastoma anaplásico pediátrico[32]​, 2011: Cáncer de recto[8]​, 2011: Cáncer de pulmón[22]​, 2012: Cáncer de ojo[33]​, 2013: Carcinoma de cavidad oral[34]​, 2015: Cáncer de esófago[35]​, 2015: Cáncer de estómago[36]​, 2018: Cáncer de pulmón[37]​, 2019: Cérvix infectado por el VPH[38]​, 2019: Cáncer de ovario[39]​, 2020: Cáncer colorrectal[40]​, 2021: Cáncer de hígado[23]​, 2021: Cáncer colorrectal[24]​.

Importancia de TKTL1 en otras áreas[editar]

Actualmente se está investigando la importancia, incluyendo la conexión con:

  • Formación de radicales, daños en el ADN y envejecimiento prematuro[41]
  • La evolución del Homo sapiens[42]​ y su rendimiento cognitivo[43]
  • Fertilidad masculina[44]

Importancia bioquímica de TKTL1[editar]

El TKTL1 es un gen que surgió a partir del gen de la transketolasa de los vertebrados inferiores a través de la duplicación de genes en el curso de la evolución de los vertebrados y sufrió cambios decisivos durante su evolución[45]​ Solo se da en los mamíferos[29]​ Además de los genes de la transketolasa TKT y TKTL1, existe otro miembro de la familia de genes de la transketolasa en los mamíferos, el gen TKTL2. El gen TKTL2 surgió a través de la integración de un ARNm de TKTL1 en el genoma y, por lo tanto, a diferencia de los genes TKT y TKTL1, no presenta intrones.[29]​ A diferencia de los genes TKT y TKTL1, aún no está claro si TKTL2 desempeña una función y cuál es. En comparación con la TKT y la TKTL2, la proteína TKTL1 tiene una deleción de 38 aminoácidos, que se debe a la no utilización del tercer exón.[45]​ Esta deleción de 38 aminoácidos también incluye aminoácidos altamente conservados e invariables que están presentes en todas las transketolasas conocidas. Debido a la ausencia de estos aminoácidos, que normalmente están siempre presentes en las transketolasas, se dudó durante mucho tiempo de la funcionalidad de la proteína TKTL1. No fue hasta 2019 cuando se produjo un avance decisivo en el desciframiento de la función del gen TKTL1 al demostrar que este es capaz de desplazar una proteína TKT del homodímero de transketolasa TKT-TKT y formar un heterodímero TKTL1-TKT que tiene propiedades enzimáticas alteradas en comparación con el homodímero TKT-TKT[46]​ Hasta ahora, las transketolasas son o se suponía que eran enzimas activas como homodímeros. La detección de los heterodímeros TKTL1-TKT y las propiedades enzimáticas alteradas asociadas son de gran importancia para los mamíferos, ya que las propiedades enzimáticas alteradas desencadenan la formación de nuevas células del organismo al aumentar la producción del azúcar ribosa y, por lo tanto, aumentar significativamente la concentración de ribosa en la célula. Dado que el azúcar ribosa y la desoxirribosa que se forma a partir de él son el bloque de construcción crucial para el ADN y el ARN, la creación del heterodímero TKTL1-TKT conduce a la formación del bloque de construcción de azúcar necesario para crear nuevo ADN y ARN para la duplicación de las células. TKTL1 controla la duplicación de las células (ciclo celular) y asegura que haya suficientes bloques de construcción para la duplicación de la célula.[46]​ También se demostró en 2021 que la activación de la transketolasa también es utilizada por los virus, como el virus del SARS-CoV, para influir en el metabolismo de la célula infectada por el virus de tal manera que el bloque de construcción de azúcares ribosa para los nuevos virus se forma con mayor frecuencia y, por lo tanto, los virus se forman más rápidamente y a un ritmo mayor.[47]

Además de la formación del bloque de construcción de azúcares ribosa, TKTL1 es capaz de formar acetil-CoA, otro bloque de construcción crucial para las nuevas células.[48]​ El acetil-CoA es el bloque de construcción básico para la formación de compuestos ricos en energía como los ácidos grasos, los cuerpos cetónicos o el colesterol. La formación de acetil-CoA posible a través de la enzima TKTL1 representa una vía hasta ahora desconocida para la formación de acetil-CoA, que permite formar acetil-CoA incluso cuando la formación de acetil-CoA que funciona a través de la piruvato deshidrogenasa está desactivada. A diferencia de la formación de acetil-CoA mediada por la piruvato deshidrogenasa, con la ayuda de la TKTL1 no se lleva a cabo ninguna descarboxilación, por lo que la conversión del azúcar en grasa es posible sin la pérdida de átomos de carbono. Esto permite que una célula forme acetil-CoA de forma mucho más eficaz para formar nuevo material celular, como las membranas celulares.

Referencias[editar]

  1. a b Coy, J. F.; Dübel, S.; Kioschis, P.; Thomas, K.; Micklem, G.; Delius, H.; Poustka, A. (15 de marzo de 1996). «Molecular cloning of tissue-specific transcripts of a transketolase-related gene: implications for the evolution of new vertebrate genes». Genomics 32 (3): 309-316. ISSN 0888-7543. PMID 8838793. doi:10.1006/geno.1996.0124. Consultado el 14 de noviembre de 2022. 
  2. Coy, Johannes F.; Dressler, Dirk; Wilde, Juergen; Schubert, Peter (2005). «Mutations in the transketolase-like gene TKTL1: clinical implications for neurodegenerative diseases, diabetes and cancer». Clinical Laboratory 51 (5-6): 257-273. ISSN 1433-6510. PMID 15991799. Consultado el 14 de noviembre de 2022. 
  3. a b Pinson, Anneline; Xing, Lei; Namba, Takashi; Kalebic, Nereo; Peters, Jula; Oegema, Christina Eugster; Traikov, Sofia; Reppe, Katrin et al. (9 de septiembre de 2022). «Human TKTL1 implies greater neurogenesis in frontal neocortex of modern humans than Neanderthals». Science (en inglés) 377 (6611): eabl6422. ISSN 0036-8075. doi:10.1126/science.abl6422. Consultado el 14 de noviembre de 2022. 
  4. Li, Yang; Yao, Cui-Fang; Xu, Fu-Jiang; Qu, Yuan-Yuan; Li, Jia-Tao; Lin, Yan; Cao, Zhong-Lian; Lin, Peng-Cheng et al. (7 de junio de 2019). «APC/CCDH1 synchronizes ribose-5-phosphate levels and DNA synthesis to cell cycle progression». Nature Communications 10 (1): 2502. ISSN 2041-1723. PMC 6555833. PMID 31175280. doi:10.1038/s41467-019-10375-x. Consultado el 14 de noviembre de 2022. 
  5. Diaz-Moralli, Santiago; Aguilar, Esther; Marin, Silvia; Coy, Johannes F.; Dewerchin, Mieke; Antoniewicz, Maciek R.; Meca-Cortés, Oscar; Notebaert, Leen et al. (9 de agosto de 2016). «A key role for transketolase-like 1 in tumor metabolic reprogramming». Oncotarget 7 (32): 51875-51897. ISSN 1949-2553. PMC 5239521. PMID 27391434. doi:10.18632/oncotarget.10429. Consultado el 14 de noviembre de 2022. 
  6. «Annemarie Poustka, Johannes Coy: Transketolase-verwandtes protein. EP0840789B1, 31. Mai 2006». 
  7. a b Li, Yang; Yao, Cui-Fang; Xu, Fu-Jiang; Qu, Yuan-Yuan; Li, Jia-Tao; Lin, Yan; Cao, Zhong-Lian; Lin, Peng-Cheng et al. (7 de junio de 2019). «APC/CCDH1 synchronizes ribose-5-phosphate levels and DNA synthesis to cell cycle progression». Nature Communications 10 (1): 2502. ISSN 2041-1723. PMC 6555833. PMID 31175280. doi:10.1038/s41467-019-10375-x. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  8. a b Schwaab, Juliana; Horisberger, Karoline; Ströbel, Philipp; Bohn, Beatrice; Gencer, Deniz; Kähler, Georg; Kienle, Peter; Post, Stefan et al. (19 de agosto de 2011). «Expression of Transketolase like gene 1 (TKTL1) predicts disease-free survival in patients with locally advanced rectal cancer receiving neoadjuvant chemoradiotherapy». BMC cancer 11: 363. ISSN 1471-2407. PMC 3176245. PMID 21854597. doi:10.1186/1471-2407-11-363. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  9. Dong, Yuke; Wang, Ming (2017-01). «Knockdown of TKTL1 additively complements cisplatin-induced cytotoxicity in nasopharyngeal carcinoma cells by regulating the levels of NADPH and ribose-5-phosphate». Biomedicine & Pharmacotherapy = Biomedecine & Pharmacotherapie 85: 672-678. ISSN 1950-6007. PMID 27916418. doi:10.1016/j.biopha.2016.11.078. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  10. Zheng, Xing; Li, Hongxia (5 de septiembre de 2018). «TKTL1 modulates the response of paclitaxel-resistant human ovarian cancer cells to paclitaxel». Biochemical and Biophysical Research Communications 503 (2): 572-579. ISSN 1090-2104. PMID 29885837. doi:10.1016/j.bbrc.2018.06.011. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  11. a b Heller, Sonja; Maurer, Gabriele D.; Wanka, Christina; Hofmann, Ute; Luger, Anna-Luisa; Bruns, Ines; Steinbach, Joachim P.; Rieger, Johannes (25 de julio de 2018). «Gene Suppression of Transketolase-Like Protein 1 (TKTL1) Sensitizes Glioma Cells to Hypoxia and Ionizing Radiation». International Journal of Molecular Sciences 19 (8): E2168. ISSN 1422-0067. PMC 6121283. PMID 30044385. doi:10.3390/ijms19082168. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  12. Baptista, Inês; Karakitsou, Effrosyni; Cazier, Jean-Baptiste; Günther, Ulrich L.; Marin, Silvia; Cascante, Marta (25 de marzo de 2022). «TKTL1 Knockdown Impairs Hypoxia-Induced Glucose-6-phosphate Dehydrogenase and Glyceraldehyde-3-phosphate Dehydrogenase Overexpression». International Journal of Molecular Sciences 23 (7): 3574. ISSN 1422-0067. PMC 8999113. PMID 35408935. doi:10.3390/ijms23073574. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  13. Sun, Wenyue; Liu, Yan; Glazer, Chad A.; Shao, Chunbo; Bhan, Sheetal; Demokan, Semra; Zhao, Ming; Rudek, Michelle A. et al. (1 de febrero de 2010). «TKTL1 is activated by promoter hypomethylation and contributes to head and neck squamous cell carcinoma carcinogenesis through increased aerobic glycolysis and HIF1alpha stabilization». Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research 16 (3): 857-866. ISSN 1557-3265. PMC 2824550. PMID 20103683. doi:10.1158/1078-0432.CCR-09-2604. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  14. Stern, Robert; Shuster, Svetlana; Neudecker, Birgit A.; Formby, Bent (15 de mayo de 2002). «Lactate stimulates fibroblast expression of hyaluronan and CD44: the Warburg effect revisited». Experimental Cell Research 276 (1): 24-31. ISSN 0014-4827. PMID 11978005. doi:10.1006/excr.2002.5508. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  15. a b c Brand, Almut; Singer, Katrin; Koehl, Gudrun E.; Kolitzus, Marlene; Schoenhammer, Gabriele; Thiel, Annette; Matos, Carina; Bruss, Christina et al. (8 de noviembre de 2016). «LDHA-Associated Lactic Acid Production Blunts Tumor Immunosurveillance by T and NK Cells». Cell Metabolism 24 (5): 657-671. ISSN 1932-7420. PMID 27641098. doi:10.1016/j.cmet.2016.08.011. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  16. a b Wang, Joy X.; Choi, Stephen Y. C.; Niu, Xiaojia; Kang, Ning; Xue, Hui; Killam, James; Wang, Yuzhuo (7 de noviembre de 2020). «Lactic Acid and an Acidic Tumor Microenvironment suppress Anticancer Immunity». International Journal of Molecular Sciences 21 (21): E8363. ISSN 1422-0067. PMC 7664620. PMID 33171818. doi:10.3390/ijms21218363. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  17. Dhup, Suveera; Dadhich, Rajesh Kumar; Porporato, Paolo Ettore; Sonveaux, Pierre (2012). «Multiple biological activities of lactic acid in cancer: influences on tumor growth, angiogenesis and metastasis». Current Pharmaceutical Design 18 (10): 1319-1330. ISSN 1873-4286. PMID 22360558. doi:10.2174/138161212799504902. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  18. Lee, Dong Chul; Sohn, Hyun Ahm; Park, Zee-Yong; Oh, Sangho; Kang, Yun Kyung; Lee, Kyoung-Min; Kang, Minho; Jang, Ye Jin et al. (23 de abril de 2015). «A lactate-induced response to hypoxia». Cell 161 (3): 595-609. ISSN 1097-4172. PMID 25892225. doi:10.1016/j.cell.2015.03.011. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  19. a b c Langbein, S.; Zerilli, M.; Zur Hausen, A.; Staiger, W.; Rensch-Boschert, K.; Lukan, N.; Popa, J.; Ternullo, M. P. et al. (27 de febrero de 2006). «Expression of transketolase TKTL1 predicts colon and urothelial cancer patient survival: Warburg effect reinterpreted». British Journal of Cancer 94 (4): 578-585. ISSN 0007-0920. PMC 2361175. PMID 16465194. doi:10.1038/sj.bjc.6602962. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  20. a b Li, Juan; Zhu, Shu-Chai; Li, Shu-Guang; Zhao, Yan; Xu, Jin-Rui; Song, Chun-Yang (2015-08). «TKTL1 promotes cell proliferation and metastasis in esophageal squamous cell carcinoma». Biomedicine & Pharmacotherapy = Biomedecine & Pharmacotherapie 74: 71-76. ISSN 1950-6007. PMID 26349965. doi:10.1016/j.biopha.2015.07.004. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  21. Xu, Xiaojun; Zur Hausen, Axel; Coy, Johannes F.; Löchelt, Martin (15 de marzo de 2009). «Transketolase-like protein 1 (TKTL1) is required for rapid cell growth and full viability of human tumor cells». International Journal of Cancer 124 (6): 1330-1337. ISSN 1097-0215. PMID 19065656. doi:10.1002/ijc.24078. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  22. a b Kayser, Gian; Sienel, Wulf; Kubitz, Britta; Mattern, Dominik; Stickeler, Elmar; Passlick, Bernward; Werner, Martin; Zur Hausen, Axel (2011-12). «Poor outcome in primary non-small cell lung cancers is predicted by transketolase TKTL1 expression». Pathology 43 (7): 719-724. ISSN 1465-3931. PMID 22027741. doi:10.1097/PAT.0b013e32834c352b. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  23. a b Wang, Jukun; Li, Yu; Zhang, Chao; Chen, Xin; Zhu, Linzhong; Luo, Tao (2021-09). «A hypoxia-linked gene signature for prognosis prediction and evaluating the immune microenvironment in patients with hepatocellular carcinoma». Translational Cancer Research 10 (9): 3979-3992. ISSN 2219-6803. PMC 8798548. PMID 35116696. doi:10.21037/tcr-21-741. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  24. a b He, Xiaobo; Ding, Jianfeng; Cheng, Xiao; Xiong, Maoming (2021). «Hypoxia-Related Gene-Based Signature Can Evaluate the Tumor Immune Microenvironment and Predict the Prognosis of Colon Adenocarcinoma Patients». International Journal of General Medicine 14: 9853-9862. ISSN 1178-7074. PMC 8687688. PMID 34938106. doi:10.2147/IJGM.S343216. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  25. «Moderne Menschen bilden mehr Nervenzellen im Gehirn als Neandertaler». idw-online.de (en alemán). Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  26. Albert, Frank W.; Somel, Mehmet; Carneiro, Miguel; Aximu-Petri, Ayinuer; Halbwax, Michel; Thalmann, Olaf; Blanco-Aguiar, Jose A.; Plyusnina, Irina Z. et al. (2012-09). «A comparison of brain gene expression levels in domesticated and wild animals». PLoS genetics 8 (9): e1002962. ISSN 1553-7404. PMC 3459979. PMID 23028369. doi:10.1371/journal.pgen.1002962. Consultado el 15 de diciembre de 2022. 
  27. Saman, S.; Stagno, M. J.; Warmann, S. W.; Malek, N. P.; Plentz, R. R.; Schmid, E. (2020). «Biomarkers Apo10 and TKTL1: Epitope-detection in monocytes (EDIM) as a new diagnostic approach for cholangiocellular, pancreatic and colorectal carcinoma». Cancer Biomarkers: Section A of Disease Markers 27 (1): 129-137. ISSN 1875-8592. PMC 7029314. PMID 31771043. doi:10.3233/CBM-190414. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  28. Stagno, Matias J.; Schmidt, Andreas; Bochem, Jonas; Urla, Cristian; Handgretinger, Rupert; Cabanillas Stanchi, Karin M.; Saup, Rafael; Queudeville, Manon et al. (2022-10). «Epitope detection in monocytes (EDIM) for liquid biopsy including identification of GD2 in childhood neuroblastoma-a pilot study». British Journal of Cancer 127 (7): 1324-1331. ISSN 1532-1827. PMC 9519569. PMID 35864157. doi:10.1038/s41416-022-01855-x. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  29. a b c Coy, Johannes F.; Dressler, Dirk; Wilde, Juergen; Schubert, Peter (2005). «Mutations in the transketolase-like gene TKTL1: clinical implications for neurodegenerative diseases, diabetes and cancer». Clinical Laboratory 51 (5-6): 257-273. ISSN 1433-6510. PMID 15991799. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  30. Langbein, Sigrun; Frederiks, Wilma M.; zur Hausen, Axel; Popa, Juljane; Lehmann, Jan; Weiss, Christel; Alken, Peter; Coy, Johannes F. (1 de junio de 2008). «Metastasis is promoted by a bioenergetic switch: new targets for progressive renal cell cancer». International Journal of Cancer 122 (11): 2422-2428. ISSN 1097-0215. PMID 18302154. doi:10.1002/ijc.23403. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  31. Krockenberger, M.; Honig, A.; Rieger, L.; Coy, J. F.; Sutterlin, M.; Kapp, M.; Horn, E.; Dietl, J. et al. (2007-01). «Transketolase-like 1 expression correlates with subtypes of ovarian cancer and the presence of distant metastases». International Journal of Gynecological Cancer: Official Journal of the International Gynecological Cancer Society 17 (1): 101-106. ISSN 1048-891X. PMID 17291239. doi:10.1111/j.1525-1438.2007.00799.x. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  32. Wu, H.-T.; Allie, N.; Myer, L.; Govender, D. (2009-05). «Anaplastic nephroblastomas express transketolase-like enzyme 1». Journal of Clinical Pathology 62 (5): 460-463. ISSN 1472-4146. PMID 19139037. doi:10.1136/jcp.2008.063966. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  33. Lange, Clemens A.; Tisch-Rottensteiner, Jan; Böhringer, Daniel; Martin, Gottfried; Schwartzkopff, Johannes; Auw-Haedrich, Claudia (2012-09). «Enhanced TKTL1 expression in malignant tumors of the ocular adnexa predicts clinical outcome». Ophthalmology 119 (9): 1924-1929. ISSN 1549-4713. PMID 22658715. doi:10.1016/j.ophtha.2012.03.037. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  34. Grimm, Martin; Schmitt, Steffen; Teriete, Peter; Biegner, Thorsten; Stenzl, Arnulf; Hennenlotter, Jörg; Muhs, Hans-Joachim; Munz, Adelheid et al. (4 de diciembre de 2013). «A biomarker based detection and characterization of carcinomas exploiting two fundamental biophysical mechanisms in mammalian cells». BMC cancer 13: 569. ISSN 1471-2407. PMC 4235042. PMID 24304513. doi:10.1186/1471-2407-13-569. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  35. Shi, Zuxuan; Tang, Yu; Li, Ke; Fan, Qingxia (2015-11). «TKTL1 expression and its downregulation is implicated in cell proliferation inhibition and cell cycle arrest in esophageal squamous cell carcinoma». Tumour Biology: The Journal of the International Society for Oncodevelopmental Biology and Medicine 36 (11): 8519-8529. ISSN 1423-0380. PMID 26032094. doi:10.1007/s13277-015-3608-7. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  36. Song, Yan; Liu, Dan; He, Guoping (2015). «TKTL1 and p63 are biomarkers for the poor prognosis of gastric cancer patients». Cancer Biomarkers: Section A of Disease Markers 15 (5): 591-597. ISSN 1875-8592. PMID 26406948. doi:10.3233/CBM-150499. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  37. Millares, Laura; Barreiro, Esther; Cortes, Roldan; Martinez-Romero, Anabel; Balcells, Cristina; Cascante, Marta; Enguita, Ana Belen; Alvarez, Carlos et al. (2018-08). «Tumor-associated metabolic and inflammatory responses in early stage non-small cell lung cancer: Local patterns and prognostic significance». Lung Cancer (Amsterdam, Netherlands) 122: 124-130. ISSN 1872-8332. PMID 30032820. doi:10.1016/j.lungcan.2018.06.015. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  38. Chiarini, Anna; Liu, Daisong; Rassu, Mario; Armato, Ubaldo; Eccher, Claudio; Dal Prà, Ilaria (2019). «Over Expressed TKTL1, CIP-2A, and B-MYB Proteins in Uterine Cervix Epithelium Scrapings as Potential Risk Predictive Biomarkers in HR-HPV-Infected LSIL/ASCUS Patients». Frontiers in Oncology 9: 213. ISSN 2234-943X. PMC 6456695. PMID 31001477. doi:10.3389/fonc.2019.00213. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  39. Zhao, Menghuang; Ye, Miaomiao; Zhou, Junhan; Zhu, Xueqiong (2019-11). «Prognostic values of transketolase family genes in ovarian cancer». Oncology Letters 18 (5): 4845-4857. ISSN 1792-1074. PMC 6781755. PMID 31611995. doi:10.3892/ol.2019.10818. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  40. Peltonen, Reetta; Ahopelto, Kaisa; Hagström, Jaana; Böckelman, Camilla; Haglund, Caj; Isoniemi, Helena (1 de septiembre de 2020). «High TKTL1 expression as a sign of poor prognosis in colorectal cancer with synchronous rather than metachronous liver metastases». Cancer Biology & Therapy 21 (9): 826-831. ISSN 1555-8576. PMC 7515493. PMID 32795237. doi:10.1080/15384047.2020.1803008. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  41. Li, Baomin; Iglesias-Pedraz, Juan Manuel; Chen, Leng-Ying; Yin, Fei; Cadenas, Enrique; Reddy, Sita; Comai, Lucio (2014-04). «Downregulation of the Werner syndrome protein induces a metabolic shift that compromises redox homeostasis and limits proliferation of cancer cells». Aging Cell 13 (2): 367-378. ISSN 1474-9726. PMC 3999508. PMID 24757718. doi:10.1111/acel.12181. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  42. Green, Richard E.; Krause, Johannes; Briggs, Adrian W.; Maricic, Tomislav; Stenzel, Udo; Kircher, Martin; Patterson, Nick; Li, Heng et al. (7 de mayo de 2010). «A draft sequence of the Neandertal genome». Science (New York, N.Y.) 328 (5979): 710-722. ISSN 1095-9203. PMC 5100745. PMID 20448178. doi:10.1126/science.1188021. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  43. Prüfer, Kay; Racimo, Fernando; Patterson, Nick; Jay, Flora; Sankararaman, Sriram; Sawyer, Susanna; Heinze, Anja; Renaud, Gabriel et al. (2 de enero de 2014). «The complete genome sequence of a Neanderthal from the Altai Mountains». Nature 505 (7481): 43-49. ISSN 1476-4687. PMC 4031459. PMID 24352235. doi:10.1038/nature12886. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  44. Rolland, A. D.; Lavigne, R.; Dauly, C.; Calvel, P.; Kervarrec, C.; Freour, T.; Evrard, B.; Rioux-Leclercq, N. et al. (2013-01). «Identification of genital tract markers in the human seminal plasma using an integrative genomics approach». Human Reproduction (Oxford, England) 28 (1): 199-209. ISSN 1460-2350. PMID 23024119. doi:10.1093/humrep/des360. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  45. a b Coy, J. F.; Dübel, S.; Kioschis, P.; Thomas, K.; Micklem, G.; Delius, H.; Poustka, A. (15 de marzo de 1996). «Molecular cloning of tissue-specific transcripts of a transketolase-related gene: implications for the evolution of new vertebrate genes». Genomics 32 (3): 309-316. ISSN 0888-7543. PMID 8838793. doi:10.1006/geno.1996.0124. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  46. a b Li, Yang; Yao, Cui-Fang; Xu, Fu-Jiang; Qu, Yuan-Yuan; Li, Jia-Tao; Lin, Yan; Cao, Zhong-Lian; Lin, Peng-Cheng et al. (7 de junio de 2019). «APC/CCDH1 synchronizes ribose-5-phosphate levels and DNA synthesis to cell cycle progression». Nature Communications 10 (1): 2502. ISSN 2041-1723. PMC 6555833. PMID 31175280. doi:10.1038/s41467-019-10375-x. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  47. Bojkova, Denisa; Costa, Rui; Reus, Philipp; Bechtel, Marco; Jaboreck, Mark-Christian; Olmer, Ruth; Martin, Ulrich; Ciesek, Sandra et al. (13 de octubre de 2021). «Targeting the Pentose Phosphate Pathway for SARS-CoV-2 Therapy». Metabolites 11 (10): 699. ISSN 2218-1989. PMC 8540749. PMID 34677415. doi:10.3390/metabo11100699. Consultado el 15 de noviembre de 2022. 
  48. Diaz-Moralli, Santiago; Aguilar, Esther; Marin, Silvia; Coy, Johannes F.; Dewerchin, Mieke; Antoniewicz, Maciek R.; Meca-Cortés, Oscar; Notebaert, Leen et al. (9 de agosto de 2016). «A key role for transketolase-like 1 in tumor metabolic reprogramming». Oncotarget 7 (32): 51875-51897. ISSN 1949-2553. PMC 5239521. PMID 27391434. doi:10.18632/oncotarget.10429. Consultado el 15 de noviembre de 2022.