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El motivo adyacente de protoespaciador (del ingles Protospacer adjacent motif (PAM)) es una secuencia de ADN de 2-6 pares de bases inmediatamente después de la secuencia de ADN dirigida por la nucleasa Cas9 en el sistema inmune adaptativo bacteriano CRISPR. [1]​ PAM es un componente del virus o plásmido invasor, pero no es un componente del locus CRISPR bacteriano. Cas9 no se unirá con éxito o escindir la secuencia de ADN diana si no es seguido por la secuencia PAM. [2][3][4][5]​ PAM is an essential targeting component (not found in bacterial genome) which distinguishes bacterial self from non-self DNA, thereby preventing the CRISPR locus from being targeted and destroyed by nuclease.[6]​ PAM es un componente de orientación esencial (que no se encuentra en el genoma bacteriano) que distingue el self bacteriano del ADN no auto, evitando así que el locus CRISPR sea atacado y destruido por nuclease.

Espaciadores / protoespaciadores Los loci de CRISPR en una bacteria contienen "espaciadores" (ADN viral insertado en un locus CRISPR) que en sistemas inmunes adaptativos de tipo II se crearon a partir de ADN viral o plasmídico invasor (denominado "protospacers"). En la invasión subsiguiente, la nucleasa Cas9 se une a tracrRNA: crRNA que guía Cas9 a la secuencia de protospacer invasora. Pero Cas9 no escindirá la secuencia protospacer a menos que haya una secuencia PAM adyacente. El espaciador en los loci bacterianos CRISPR no contendrá una secuencia PAM, y por lo tanto no se cortará por la nucleasa. Sin embargo, el protospacer en el virus o plásmido invasor contendrá la secuencia PAM y, por lo tanto, será escindido por la nucleasa Cas9. [4]​ Para la edición de genes, se guıan los ARN guıa (gRNAs) para realizar la función del complejo tracrRNA: crRNA en el reconocimiento de las secuencias génicas que tienen una secuencia PAM en el extremo 3 '. [7][8]

Secuencias PAM La PAM canónica es la secuencia 5'-NGG-3 'donde "N" es cualquier nucleobase seguido de dos nucleobases de guanina ("G"). [9] Guía ARNs (gRNAs) puede transportar Cas9 a cualquier parte del genoma para la edición de genes, pero no se puede editar en cualquier sitio distinto de uno en el que Cas9 reconoce PAM. El PAM canónico se asocia con la nucleasa Cas9 de Streptococcus pyogenes (designado SpCas9), mientras que diferentes PAM se asocian con las proteínas Cas9 de las bacterias Neisseria meningitidis, Treponema denticola y Streptococcus thermophilus [10]. 5'-NGA-3 'puede ser un altamente eficiente no-canónico PAM para las células humanas, pero la eficiencia varía con la ubicación del genoma. [11] Se han realizado intentos para que el ingeniero Cas9s reconozca diferentes PAMs para mejorar la capacidad de CRISPR-Cas9 para hacer la edición de genes en cualquier ubicación del genoma deseada. [12]

Cas9 de Francisella novicida reconoce la secuencia PAM canónica 5'-NGG-3 ', pero ha sido diseñado para reconocer la PAM 5'-YG-3' (donde "Y" es una pirimidina [13]), De posibles objetivos Cas9. [14] La nucleasa Cpf1 de Francisella novicida reconoce la PAM 5'-TTTN-3 '[15] o 5'-YTN-3'. [16]

Aparte de CRISPR-Cas9 y CRISPR-Cpf1, hay sin duda muchas nucleasas aún no descubiertas y PAMs. [17]

CRISPR / C2c2 de la bacteria Leptotrichia shahii es CRISPR guiado por ARN que se dirige al ARN en lugar del ADN. El PAM no es relevante para un CRISPR dirigido a ARN, aunque una guanina que flanquea el objetivo afecta la eficacia, y ha sido designado Sitio de Acompañamiento de Protospacer (PFS). [18]

GUIDE-Seq Se ha ideado una tecnología llamada GUIDE-Seq para analizar las divisiones fuera de destino producidas por dicha edición de genes. [19] El requisito de PAM puede ser explotado para dirigirse específicamente mutaciones de un solo nucleótido heterocigotos, mientras que no ejercen efectos aberrantes en los alelos de tipo salvaje [20]

Ver también CRISPR CRISPR / Cpf1 Enlaces externos Guía de Addgene CRISPR-Cas

Referencias

  1. «Protospacer recognition motifs: mixed identities and functional diversity». RNA Biology 10 (5): 891-899. 2013. PMC 3737346. PMID 23403393. doi:10.4161/rna.23764.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  2. «Short motif sequences determine the targets of the prokaryotic CRISPR defence system». Microbiology (journal) 155 (Pt 3): 733-740. 2009. PMID 19246744. doi:10.1099/mic.0.023960-0.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  3. «Protospacer recognition motifs: mixed identities and functional diversity». RNA Biology 10 (5): 891-899. 2013. PMC 3737346. PMID 23403393. doi:10.4161/rna.23764.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  4. a b «A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity». Science 337 (6096): 816-821. 2012. PMID 22745249. doi:10.1126/science.1225829.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  5. «DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9». Nature 507 (7490): 62-67. 2014. PMC 4106473. PMID 24476820. doi:10.1038/nature13011.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  6. «Cas9 as a versatile tool for engineering biology». Nature Methods 10 (10): 957-963. 2013. PMC 4051438. PMID 24076990. doi:10.1038/nmeth.2649.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  7. «RNA-guided human genome engineering via Cas9». Science 339 (6121): 823-826. 2013. PMC 3712628. PMID 23287722. doi:10.1126/science.1232033.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)
  8. «Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems». Science 339 (6121): 819-823. 2013. PMC 3795411. PMID 23287718. doi:10.1126/science.1231143.  Parámetro desconocido |vauthors= ignorado (ayuda)