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Flujo de trabajo de CyTOF

La citometría por tiempo de vuelo , o CyTOF , es una aplicación de citometría de masas que se utiliza para cuantificar objetivos marcados en la superficie y el interior de células individuales. CyTOF permite la cuantificación de múltiples componentes celulares simultáneamente usando un detector ICP-MS .[1]

CyTOF aprovecha el inmunomarcaje para cuantificar proteínas , carbohidratos o lípidos en una célula. Los objetivos se seleccionan para responder a una pregunta de investigación específica y se marcan con anticuerpos marcados con metal lantánido . Las células marcadas se nebulizan y se mezclan con gas argón calentado para secar las partículas que contienen células. La mezcla de gas de muestra se enfoca y se enciende con un soplete de plasma de argón . Esto rompe las células en sus átomos individuales y crea una nube de iones. Los abundantes iones de bajo peso generados a partir del aire ambiental y las moléculas biológicas se eliminan mediante un analizador de masas de cuadrupolo . Los iones pesados ​​restantes de las etiquetas de anticuerpos se cuantifican medianteEspectrometría de masas de tiempo de vuelo .  abundancia de iones se correlaciona con la cantidad de diana por célula y se puede utilizar para inferir las cualidades celulares. [2][3]

La sensibilidad de la espectrometría de masas para detectar diferentes iones permite realizar mediciones de más de 50 objetivos por celda y evita los problemas de superposición espectral que se observan cuando se utilizan sondas fluorescentes.  Sin embargo, esta sensibilidad también significa que la contaminación por trazas de metales pesados ​​es una preocupación.  El uso de un gran número de sondas crea nuevos problemas en el análisis de los datos de gran dimensión generados. [4][5]

Referencias

  1. Palit, Subarna; Heuser, Christoph; de Almeida, Gustavo P.; Theis, Fabian J.; Zielinski, Christina E. (3 de julio de 2019). «Meeting the Challenges of High-Dimensional Single-Cell Data Analysis in Immunology». Frontiers in Immunology 10: 1515. ISSN 1664-3224. PMC 6634245. PMID 31354705. doi:10.3389/fimmu.2019.01515. Consultado el 23 de abril de 2022. 
  2. Wang, Wenjing; Su, Bin; Pang, Lijun; Qiao, Luxin; Feng, Yingmei; Ouyang, Yabo; Guo, Xianghua; Shi, Hongbo et al. (2020-6). «High-dimensional immune profiling by mass cytometry revealed immunosuppression and dysfunction of immunity in COVID-19 patients». Cellular and Molecular Immunology 17 (6): 650-652. ISSN 1672-7681. PMC 7186533. PMID 32346099. doi:10.1038/s41423-020-0447-2. Consultado el 23 de abril de 2022. 
  3. Olsen, Lars R.; Leipold, Michael D.; Pedersen, Christina B.; Maecker, Holden Terry (2019-02). «The anatomy of single cell mass cytometry data». Cytometry Part A (en inglés) 95 (2): 156-172. ISSN 1552-4922. doi:10.1002/cyto.a.23621. Consultado el 23 de abril de 2022. 
  4. Spitzer, Matthew H.; Nolan, Garry P. (5 de mayo de 2016). «Mass Cytometry: Single Cells, Many Features». Cell 165 (4): 780-791. ISSN 0092-8674. PMC 4860251. PMID 27153492. doi:10.1016/j.cell.2016.04.019. Consultado el 23 de abril de 2022. 
  5. Gadalla, Ramy; Noamani, Babak; MacLeod, Bethany L.; Dickson, Russell J.; Guo, Mengdi; Xu, Wenxi; Lukhele, Sabelo; Elsaesser, Heidi J. et al. (17 de mayo de 2019). «Validation of CyTOF Against Flow Cytometry for Immunological Studies and Monitoring of Human Cancer Clinical Trials». Frontiers in Oncology 9: 415. ISSN 2234-943X. PMC 6534060. PMID 31165047. doi:10.3389/fonc.2019.00415. Consultado el 23 de abril de 2022.