Antígeno Duffy

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Antígeno Duffy
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El antígeno Duffy, también conocido como glicoproteína Fy (abreviado FY) o CD234 (por sus siglas Cluster de diferenciación 234), es una proteína que en humanos está codificada por el gen ACKR1 .[1]​[2]​[3]​

El antígeno Duffy se encuentra ubicado en la superficie de los glóbulos rojos y recibe el nombre del paciente en quien la proteína fue descubierta. La proteína es codificada por el gen ACKR1 y produce una proteína de membrana glicosilada y un receptor celular no específico para varios tipos de ligandos tipo quimiocina. La proteína también funciona como receptor de los parásitos de la palúdicos humanos Plasmodium vivax, Plasmodium knowlesi y el parásito palúdico de los simios Plasmodium cynomolgi.[4]​ Los polimorfismos en este gen son la base del sistema de grupos sanguíneos de Duffy.[5]​

Descubrimiento[editar]

En los años 1920 se observó en estudios científicos que los personas de raza negra africanas tenían cierta resistencia natural e intrínseca a la malaria. El gen del antígeno Duffy fue el cuarto gen asociado con este tipo de resistencia habiéndose previamente comporbado los genes responsables de la anemia de células falciformes, la talasemia y la glucosa-6-fosfato deshidrogenasa .[cita requerida]

En 1950 se descubrió el antígeno Duffy en un individuo hemofílico transfundido en múltiples ocasions cuyo suero sanguíneo contenía el primer ejemplar aislado del anticuerpo anti-Fya.[6]​ En 1951, se descubrió en suero el anticuerpo contra un segundo antígeno, Fyb. Utilizando estos dos anticuerpos, se definieron tres fenotipos comunes: Fy(a+b+), Fy(a+b-) y Fy(a-b+).[cita requerida]

Posteriormente se descubrieron otros tipos de antígenos Fy, lo que ha elevado el total actual a seis: Fya, Fyb, Fy3, Fy4, Fy5 y Fy6. Solo Fya, Fyb y Fy3 se consideran de importancia clínica. Rara vez se han informado reacciones por causa del Fy5. El antígeno Fy4, descrito originalmente en los glóbulos rojos Fy (a–b–), ahora se cree que es un antígeno distinto, no relacionado y ya no está incluido en el sistema FY.[cita requerida]

Genética y genómica[editar]

El gen del receptor del antígeno Duffy produce un tipo de quimiocina (gp-Fy y reescrito como AKCR1; CD234). El gen está ubicado en el brazo largo del cromosoma 1 (1.q22-1.q23) y fue clonado por primera vez en 1993.[2]​ El gen se ubicó por primera vez en el cromosoma 1 en 1968 siendo el primer antígeno del sistema sanguíneo en localizarse a un cromosoma específico. Es un gen de una sola copia que abarca más de 1500 bases nitrogenadas y se encuentra incrustado entre dos exones. El gen codifica un tipo de glicoproteína ácida de 336 aminoácidos. Este gen lleva a todos los determinantes antigénicos del sistema de grupos sanguíneos de Duffy, y consta de cuatro alelos codominantes, FY*A y FY*B que codifican los antígenos Fy-a y Fy-b respectivamente, FY*X y FY*Fy, cinco fenotipos ( Fy-a, Fy-b, Fy-o, Fy-x y Fy-y) y cinco antígenos. Se ha comporobado que Fy-x es una forma de Fy-b en la que el gen Fy-b se expresa de forma deficiente. Fy-x también recibe la nomenclatura Fy-b débil o Fy-b Wk por sus siglas en inglés.

Los antígenos Fy-a y Fy-b difieren en un único aminoácido en la posición 42: glicina en Fy-a y ácido aspártico en Fy-b (por la precencia de guanina en Fy-a y de adenosina en Fy-b en la posición 125). Se ha demostrado una segunda mutación que causa un fenotipo Duffy negativo: la mutación responsable es G en sustitución de A en la posición 298 del gen. La base genética para el fenotipo Fy(ab-) es una mutación puntual en el promotor específico de eritroides (una mutación formada por sustitución T -> C en la posición -33 el cual se encuentra en el cuadro GATA).[7]​ Esta mutación ocurre en el alelo Fy-b y se ha denominado Fy-b Es (por sus siglas: eritroide silencioso). Posteriormente se lograron identificar dos isotipos. El alelo Fy-x se caracteriza por tener una débil reacción por anticuerpo anti-Fy-b y parece ser el resultado de dos transiciones separadas: citosina 265 treonina (arginina 89 cisteína) y guanina 298 adenosina (alanina 100 treonina). También se ha descrito en estudios una tercera mutación (una transversión) en este gen, G145T ( alanina 49 serina ), el cual se ha asociado con el fenotipo Fy-x.

La mayoría de individuos negroides con expersión Duffy negativos portan un alelo silencioso Fy-b con una única sustitución de T por C en el nucleótido -33. Esto produce una proteína que afecta la actividad del promotor en las células eritroides al interrumpir un sitio de unión para su liigando que es el factor de transcripción eritroide GATA1. El gen todavía se transcribe en células no eritroides en presencia de esta mutación .

El fenotipo Duffy negativo ocurre con poca frecuencia entre individuos de raza blanca (~3,5 % de la población) y se debe a una mutación que da como resultado una proteína inestable (Arg89Cys: citosina -> timidina en la posición 265).[8]​

El alelo silencioso ha evolucionado al menos dos veces en la población negroide de África y se ha encontrado evidencia de selección para este alelo entre la población.[9]​ La presión de selección involucrada en estos casos parece ser más compleja de lo que podrían sugerir estudios del pasado de situaciones similares.[10]​ También se ha documentado una evolución de manera independiente de la africana de este fenotipo en Papúa Nueva Guinea .[11]​

Un estudio científico tipo comparativo relacionado con este gen en siete especies de mamíferos reveló diferencias significativas entre las especies estudiadas.[12]​ Las especies examinadas incluyeron Pan troglodytes (chimpancé), Macaca mulatta (mono rhesus), Pongo pygmaeus (orangután), Rattus norvegicus (rata marrón), Mus musculus (ratón), Monodelphis domestica (zarigüeya), Bos taurus (vaca) y Canis familiaris.

Tres exones están presentes en el gen del antígeno Duffy en humanos y chimpancés, mientras que solo dos exones ocurren en otras especies. Este exón adicional está ubicado en el extremo 5' y no codifica ninguna proteína en absoluto. Tanto el tamaño del intrón como el del exón varían considerablemente entre las especies examinadas. Entre el chimpancé y el humano se observaron 24 diferencias en la secuencia de nucleótidos. De estos, 18 fueron observadas en regiones no codificantes. De los 6 restantes, 3 eran mutaciones sinónimas y 3 mutaciones no sinónimas. No se conoce el significado de estas mutaciones o sus consecuencias en ninguna especie.

El ortólogo de ratón ha sido clonado y presenta una homología del 63 % con el gen humano a nivel de aminoácidos del grupo Duffy. El gen del ratón también se encuentra en el cromosoma 1 entre los marcadores genéticos Xmv41 y D1Mit166. El gen del ratón tiene dos exones (100 y 1064 nucleótidos de longitud respectivamente), separados por un intrón de 461 pares de bases. En el ratón, el antígeno Duffy se expresa durante el desarrollo embrionario entre los días 9,5 y 12.[cita requerida]

En los babuinos amarillos ( Papio cynocephalus ), las mutaciones en este gen se han asociado con la protección contra la infección por especies del género Hepatocystis .[13]​

La forma ancestral de los alelos DARC existentes en humanos parece ser el alelo FY*B.[14]​

El gen parece estar bajo una fuerte selección purificadora.[15]​ La causa de esta presión selectiva aún no ha sido identificada.

Biología Molecular[editar]

El análisis bioquímico del antígeno Duffy ha demostrado que tiene un alto contenido de estructura secundaria α-helicoidal, típica de los receptores de quimiocinas.[16]​ Sus N-glucanos son en su mayoría del tipo de complejo triantenario terminado con residuos de ácido siálico enlazados en α2-3 y α2-6 con GlcNAc bisectriz y fucosa enlazada en α1-6 en el núcleo.

El antígeno Duffy se expresa en mayor cantidad en los reticulocitos que en los eritrocitos maduros.[17]​ Si bien el antígeno de Duffy se expresa en los eritroblastos de la médula ósea y los eritrocitos circulantes, también se encuentra en las células de Purkinje del cerebelo,[18]​ las células endoteliales de los capilares tiroideos, las vénulas poscapilares de algunos órganos, incluidos el bazo, el hígado y los riñones[19]​ y las grandes vénulas pulmonares. El antígeno Duffy tiene entonces un perfil de expresión celular único en neuronas cerebelosas, células endoteliales venulares y células eritroides.[20]​ En algunas personas que carecen del antígeno Duffy en sus eritrocitos, todavía se expresa en los otros tipos de células.[21]​

El antígeno tiene dos sitios potenciales de glicosilación ligados a N en la asparagina (Asn) 16 y Asn27.

Se ha descubierto que el antígeno Duffy actúa como un receptor multiespecífico para las quimiocinas de las familias CC y CXC, que incluyen:

  • proteína quimiotáctica de monocitos-1 (MCP-1) - CCL2[22]​
  • regulado tras la activación normal T expresada y secretada (RANTES) - CCL5[23]​
  • actividad estimulante del crecimiento del melanoma (MSGA-α), KC, proteína activadora de neutrófilos 3 (NAP-3) - CXCL1 / CXCL2[24]​

Es también receptor para las quimiocinas angiogénicas CXC:

  • Gen relacionado con el crecimiento alfa (GRO-α) - CXCL1
  • Factor plaquetario 4 - CXCL4[25]​
  • ENA-78 - CXCL5
  • Péptido activador de neutrófilos-2 (NAP-2) - CXCL7
  • Interleucina-8 (IL-8) - CXCL8

En consecuencia, la proteína Fy también se conoce como DARC (Duffy Antigen Receptor for Chemokines). El sitio de unión de la quimiocina en el receptor parece estar localizado en el extremo amino .[26]​ Se prevé que el antígeno tenga 7 dominios transmembrana, un dominio N-terminal exocelular y un dominio C-terminal endocelular. La alineación con otros siete receptores acoplados a proteína G transmembrana muestra que DARC carece del motivo DRY altamente conservado en el segundo bucle intracelular de la proteína que se sabe que está asociado con la señalización de proteína G. De acuerdo con este hallazgo, la unión del ligando por DARC no induce la transducción de señales acopladas a proteína G ni un flujo de Ca2+ a diferencia de otros receptores de quimiocinas. Según estas alineaciones, se considera que el antígeno Duffy es el más similar a los receptores de la interleucina-8B .

El análisis de Scatchard de los estudios de unión competitiva ha demostrado una unión de alta afinidad al antígeno Duffy con valores de unión de constantes de disociación (KD) de 24 ± 4,9, 20 ± 4,7, 41,9 ± 12,8 y 33,9 ± 7 nanomoles para MGSA, interleucina-8, RANTES y péptido-1 quimiotáctico de monocitos respectivamente.[27]​

En las células transfectadas con DARC, el DARC se internaliza después de la unión del ligando y esto condujo a la hipótesis de que la expresión de DARC en la superficie de los eritrocitos, las células endoteliales, neuronales y las células epiteliales puede actuar como una esponja y proporcionar un mecanismo por el cual las quimiocinas inflamatorias pueden ser liberadas. eliminados de la circulación, así como su concentración modificada en el medio ambiente local.[28]​ Esta hipótesis también ha sido cuestionada después de que se crearan ratones knock-out . Estos animales parecían sanos y tenían respuestas normales a la infección. Si bien la función del antígeno Duffy permanece actualmente (2006) desconocida, se está acumulando evidencia que sugiere un papel en la migración de neutrófilos de la sangre a los tejidos[29]​ y en la modulación de la respuesta inflamatoria.[30]​[31]​[32]​[33]​[34]​[35]​[36]​[37]​[38]​[39]​

También se sabe que el antígeno interactúa con la proteína KAI1 (CD82), una glicoproteína de superficie de los leucocitos, y puede tener un papel en el control del cáncer.

Se ha demostrado que el antígeno Duffy existe como un homo-oligómero constitutivo y que se hetero-oligomeriza con el receptor de quimioquinas CC CCR5 (CD195). La formación de este heterodímero altera la quimiotaxis y el flujo de calcio a través de CCR5, mientras que la internalización de CCR5 en respuesta a la unión del ligando permanece sin cambios.[40]​

Se ha demostrado que el antígeno Duffy internaliza las quimiocinas pero no las elimina.[41]​ Interviene en la transcitosis de quimiocinas, lo que conduce a la retención apical de quimiocinas intactas y a una mayor migración de leucocitos.

La actividad estimulante del crecimiento del melanoma de unión inhibe la unión de P. knowlesi al antígeno Duffy.

Genética poblacional[editar]

Las diferencias en la distribución racial de los antígenos de Duffy se descubrieron en 1954, cuando se comprobó que la gran mayoría de las personas de ascendencia africana tenían el fenotipo eritrocitario Fy(ab-): 68 % en afroamericanos y 88-100 % en africanos (incluido más del 90% de los habitantes de África Occidental).[42]​ Este fenotipo es extremadamente inusual en individuos caucasoide. Debido a que el antígeno Duffy es poco común en los descendientes de africanos negros, la presencia de este antígeno se ha utilizado para detectar una mezcla genética . En una muestra de afroamericanos (n = 235), afrocaribeños (n = 90) y colombianos (n = 93) no emparentados, la frecuencia del alelo -46T (Duffy positivo) fue del 21,7 %, 12,2 % y 74,7 % respectivamente.[43]​

En general, las frecuencias de los antígenos Fya y Fyb en los de raza blanca son del 66 % y el 83 % respectivamente, en los asiáticos del 99 % y el 18,5 % respectivamente y en los negros del 10 % y el 23 % respectivamente. La frecuencia de Fy3 es 100% blancos, 99,9% asiáticos y 32% negros. Las frecuencias fenotípicas son:

  • Fy(a+b+): 49% blancos, 1% negros, 9% chinos
  • Fy(a-b+): 34 % blancos, 22 % negros, <1 % chinos
  • Fy(a+b-): 17% blancos, 9% negros, 91% chinos

Si bien anteriormente se había sugerido un posible rol en la protección de los humanos contra la malaria, esto solo se pudo ser comprobado clínicamente en 1976.[44]​ Desde entonces, se han llevado a cabo muchas encuestas para dilucidar la prevalencia de los alelos del antígeno Duffy en diferentes poblaciones, entre ellas:

  • Se pensaba que la mutación Ala100Thr (G -> A en la posición del primer codón, número de base 298) dentro del alelo FY*B era un genotipo puramente blanco, pero desde entonces se ha descrito en brasileños. Sin embargo, los autores del estudio señalan que la población brasileña surgió de matrimonios entre portugueses, negros africanos e indios, lo que explica la presencia de esta mutación en algunos miembros de los grupos no blancos de Brasil. Dos de los tres sujetos de prueba afrobrasileños que tenían la mutación (de un total de 25 afrobrasileños probados) también estaban relacionados entre sí, ya que uno era madre y el otro su hija.[45]​
  • Este antígeno, junto con otros antígenos de grupos sanguíneos, se utilizó para identificar al pueblo vasco como un grupo genéticamente separado.[46]​ Su uso en ciencia forense está bajo consideración.[47]​
  • Las islas Andaman y Nicobar, parte de la India, fueron originalmente habitadas por 14 tribus aborígenes. Varios de estos se han extinguido. Una tribu sobreviviente, los jarawas, vive en tres áreas selváticas del sur de Andamán y una área selvática en el centro de Andamán . El área es endémica para la malaria . La especie causal es Plasmodium falciparum : no hay evidencia de la presencia de Plasmodium vivax . El grupo sanguíneo reveló la ausencia de los antígenos Fy(a) y Fy(b) en dos áreas y una baja prevalencia en otras dos.[48]​
  • En los judíos yemenitas la frecuencia del alelo Fy es de 0,5879[49]​ La frecuencia de este alelo varía de 0,1083 a 0,2191 entre los judíos de Oriente Medio, Norte de África y Sur de Europa . La incidencia de Fya entre los judíos asquenazíes es de 0,44 y entre los judíos no asquenazíes es de 0,33. La incidencia de Fyb es mayor en ambos grupos con frecuencias de 0,53 y 0,64 respectivamente.[50]​
  • En las poblaciones étnicas chinas, las personas Han y She, las frecuencias de los alelos Fya y Fyb fueron 0,94 y 0,06 y 0,98 y 0,02 respectivamente.[51]​
  • La frecuencia del alelo Fya en la mayoría de las poblaciones asiáticas es ~95%.
  • En Gran Comora (también conocida como Ngazidja ) la frecuencia del fenotipo Fy(a- b-) es 0,86.[52]​
  • La incidencia de Fy(a+b-) en el norte de la India entre los donantes de sangre es del 43,85%.[53]​
  • En el Magreb, el Cuerno de África y el valle del Nilo, las poblaciones de habla afroasiática (camítico-semita) son en gran parte Duffy-positivas.[54]​ Se encontró que entre el 70% y el 98% de los grupos hamito-semíticos en Etiopía eran Duffy-positivos.[55]​ El análisis serológico y basado en el ADN de 115 tunecinos no emparentados también encontró una frecuencia FY*X de 0,0174; FY*1 = 0,291 (expresado 0,260, silencioso 0,031); FY*2 = 0,709 (expresado 0,427; silencioso 0,282). Dado que el FY*2 silencioso es el alelo más común en África Occidental, su presencia menor en la muestra probablemente representa una difusión reciente desde esta última región.[56]​
  • En Nuakchot, Mauritania, en general, el 27% de la población es Duffy positiva. El 54% de los moros son positivos para el antígeno Duffy, mientras que solo el 2% de los grupos étnicos negros (principalmente Poular, Soninke y Wolof ) son Duffy positivos.[57]​
  • Se ha producido un mapa de la distribución del antígeno Duffy.[58]​ El alelo más prevalente a nivel mundial es FY*A. En el África subsahariana, el alelo predominante es la variante silenciosa FY*B ES .
  • En Irán, el fenotipo Fy (ab-) se encontró en el 3,4%.[59]​

Estudios hacen indicar que hubo un barrido selectivo en África que redujo allí la incidencia de este antígeno. Este barrido parece haber ocurrido hace entre 6.500 y 97.200 años (intervalo de confianza del 95 %)[9]​

Importancia clínica[editar]

Históricamente, no se ha apreciado el papel de este antígeno, aparte de su importancia como receptor de protozoos Plasmodium . Trabajos recientes han identificado una serie de funciones adicionales para esta proteína.

Malaria[editar]

En los eritrocitos, el antígeno Duffy actúa como un receptor para la invasión de los parásitos palúdicos humanos P. vivax y P. knowlesi . Esta relación fue deomstrada por primera vez en 1980. Se cree que los individuos Duffy negativos cuyos eritrocitos no expresan el receptor son resistentes a la invasión de merozoítos[60]​ aunque se ha informado infección por P. vivax en niños Duffy negativos en Kenia, lo que sugiere un papel en la resistencia a la enfermedad, no en la infección.[60]​ Este antígeno también puede desempeñar un papel en la invasión de eritrocitos en el parásito de la malaria de roedores P. yoelii. El epítopo Fy6 es necesario para la invasión de P. vivax .[17]​

La protección contra el paludismo por P. vivax conferida por la ausencia del antígeno Duffy parece ser, en el mejor de los casos, muy limitada en Madagascar . Aunque el 72% de la población es negativa para el antígeno Duffy, el 8,8% de los individuos negativos para el antígeno Duffy eran portadores asintomáticos de P. vivax .[61]​ También se ha encontrado malaria en Angola y Guinea Ecuatorial en individuos Duffy negativos.[62]​ También se ha notificado paludismo por P. vivax en un individuo con antígeno Duffy negativo en Mauritania .[63]​ Se han informado infecciones similares en Brasil[64]​[65]​ y Kenia .[60]​ Se han informado casos adicionales de infección en individuos con antígeno Duffy negativo en el Congo[66]​ y Uganda.[67]​ Un estudio en Brasil sobre la protección contra P. vivax que ofrece la falta del antígeno Duffy no encontró resistencia diferencial a la malaria vivax entre individuos positivos y negativos para el antígeno Duffy.[68]​

El mono nocturno de Nancy Ma ( A. nancymaae ) se ha usado como modelo animal de la infección por P. vivax . Los eritrocitos de esta especie poseen el antígeno Duffy y este antígeno se utiliza como receptor de P. vivax en los eritrocitos de esta especie.[69]​

El examen de este gen en 497 pacientes en el Estado de Amazonas, Brasil, realizado por el médico Sérgio Albuquerque, sugiere que los genotipos FY*A/FY*B-33 y FY*B/FY*B-33 (donde -33 se refiere a la mutación nula en la posición -33 en el cuadro GATA) puede tener una ventaja sobre los genotipos FY*A/FY*B y FY*A/FY*A, FY*A/FY*B, FY*A/FY*X y AF*B/AF*X.[70]​ Los genotipos FY*A/FY*B y FY*A/FY*A demostraron estar asociados con mayores tasas de infección por P. vivax y se demostró que FY*B/FY*X y FY*A/FY*X asociarse con los bajos niveles de parasitismo.

Se ha informado una diferencia entre la susceptibilidad a la malaria por Plasmodium vivax .[71]​ Los eritrocitos que expresaban Fya tenían un 41-50% menos de unión a P. vivax en comparación con las células Fyb. Las personas con el fenotipo Fy(a+b-) tienen un 30-80% menos de riesgo de paludismo clínico por vivax pero no por paludismo falciparum.

La unión del factor plaquetario 4 (CXCL4) parece ser crítica para la destrucción de P. falciparum inducida por las plaquetas.[72]​

La proteína de unión al antígeno Duffy en P. vivax se compone de tres subdominios y se cree que funcionan tipo dímero.[73]​ Los residuos críticos de unión al antígeno Duffy se concentran en la interfaz del dímero y a lo largo de una superficie relativamente plana que abarca porciones de dos subdominios.

Un estudio en Brasil confirmó el efecto protector de FY*A/FY*O contra la malaria.[74]​ En cambio el genotipo FY*B/FY*O se asoció con mayor riesgo.

Asma[editar]

El asma es más común y tiende a ser más grave en personas de ascendencia africana. Parece haber una correlación con los niveles de IgE total y el asma y las mutaciones en el antígeno Duffy.[75]​

Hematopoyesis[editar]

El antígeno Duffy juega un papel fundamental en la hematopoyesis .[76]​ De hecho, los glóbulos rojos nucleados presentes en la médula ósea tienen una alta expresión de DARC, lo que facilita su contacto directo con las células madre hematopoyéticas . La ausencia de DARC eritroide altera la hematopoyesis, incluidas las células madre y progenitoras, lo que finalmente da lugar a neutrófilos fenotípicamente distintos. Como resultado, los neutrófilos maduros de los individuos Duffy-negativos llevan más "armas" moleculares contra los patógenos infecciosos.[77]​ Por lo tanto, patrones fisiológicos alternativos de hematopoyesis y producción de células de la médula ósea dependen de la expresión de DARC en el linaje eritroide.[76]​

Se sabe que una proporción significativa (25-50%) de afroamericanos por lo demás sanos tienen un recuento de glóbulos blancos persistentemente más bajo que el rango normal definido para personas de ascendencia europea, una condición conocida como neutropenia étnica benigna. Esta condición también se encuentra en los árabes jordanos, los beduinos negros, los beta israelíes, los judíos yemenitas y los antillanos . Esta condición se asocia con una capacidad reducida para movilizar las reservas de neutrófilos de la médula ósea en respuesta a los corticosteroides, a pesar de la celularidad normal y la maduración de todas las líneas celulares en los aspirados de médula ósea. Se ha encontrado evidencia fuertemente sugestiva que relaciona la condición con una mutación en el gen Duffy.[78]​ Los neutrófilos distintivos que se forman en ausencia de DARC en el linaje eritroide (ver arriba - papel de DARC en la hematopoyesis) abandonan fácilmente el torrente sanguíneo, lo que explica la aparente menor cantidad de neutrófilos en la sangre de individuos Duffy-negativos.[76]​[77]​

Cáncer[editar]

Las interacciones entre el supresor de metástasis KAI1 en las células tumorales y el receptor de citoquinas DARC en las células vasculares adyacentes suprime la metástasis tumoral.[79]​ En muestras de cáncer de mama humano, la baja expresión de la proteína DARC se asocia significativamente con el estado del receptor de estrógeno, tanto en los ganglios linfáticos como en la metástasis a distancia y con una supervivencia deficiente.[80]​

Infección por VIH[editar]

Se ha encontrado una conexión entre la susceptibilidad al VIH y la expresión del antígeno Duffy. La ausencia del receptor DARC parece aumentar la susceptibilidad a la infección por VIH. Sin embargo, una vez establecida, la ausencia del receptor DARC parece ralentizar la progresión de la enfermedad.[81]​

El VIH-1 parece poder unirse a los eritrocitos a través del antígeno Duffy.[81]​

La asociación entre el antígeno Duffy y la infección por VIH parece ser compleja. La leucopenia (un recuento bajo total de glóbulos blancos) se asocia con una supervivencia relativamente baja en la infección por VIH y esta asociación es más marcada en los blancos que en las personas de ascendencia africana negra, a pesar de los recuentos de glóbulos blancos (en promedio) más bajos que se encuentran en los africanos negros. Esta diferencia parece estar correlacionada con un genotipo particular (-46C/C) asociado con la ausencia del antígeno Duffy.[82]​ Este genotipo solo se ha encontrado en negros africanos y sus descendientes. La fuerza de esta asociación aumenta inversamente con el recuento total de glóbulos blancos. La base de esta asociación probablemente esté relacionada con el papel del antígeno Duffy en la unión de citoquinas, pero esto aún no se ha verificado.

Inflamación[editar]

Se ha reportado una asociación con los niveles de proteína quimioatrayente de monocitos-1 y el antígeno Duffy en eritrocitos.[83]​

En la población de Cerdeña, una asociación de varias variantes en el gen del antígeno Duffy (codificante y no codificante) se correlaciona con niveles séricos elevados de proteína quimioatrayente de monocitos (MCP-1). Una nueva variante en esta población, que consiste en la sustitución del aminoácido arginina por una cisteína en la posición 89 de la proteína, disminuye la capacidad de unirse a las quimioquinas.[84]​

El antígeno también se ha relacionado con la artritis reumatoide (AR), posiblemente mostrando quimiocinas como CXCL5 en la superficie de las células endoteliales dentro del sinovio, lo que aumenta el reclutamiento de neutrófilos en el estado de la enfermedad.[85]​

Trasplante de pulmón[editar]

El antígeno Duffy se ha implicado en el rechazo del trasplante de pulmón.[86]​

Mieloma múltiple[editar]

Se ha informado una mayor incidencia del antígeno Duffy en pacientes con mieloma múltiple en comparación con controles sanos.[87]​

Neumonía[editar]

El antígeno Duffy está presente en el lecho vascular pulmonar normal. Su expresión está aumentada en los lechos vasculares y tabiques alveolares del parénquima pulmonar durante la neumonía supurativa.[88]​

El embarazo[editar]

El antígeno Duffy se ha implicado en la enfermedad hemolítica del recién nacido.

Cáncer de próstata[editar]

Estudios experimentales han sugerido que la expresión del antígeno Duffy inhibe el crecimiento del tumor de próstata. Los hombres afrodescendientes tienen un mayor riesgo de cáncer de próstata que los hombres descendientes de europeos o asiáticos (un 60 % más de incidencia y el doble de mortalidad en comparación con los blancos). Sin embargo, la contribución de DARC a este mayor riesgo se ha probado en hombres jamaiquinos de ascendencia africana negra.[89]​ Se encontró que ninguno de los mayores riesgos podía atribuirse al gen DARC. La razón de este aumento del riesgo aún se desconoce.

Psiquiatría[editar]

El uso del agente antipsicótico clozapina se asocia con neutropenia . Se ha informado un mayor riesgo de este efecto secundario en pacientes nulos para el antígeno Duffy.[90]​

Trasplante renal[editar]

Los anticuerpos y una respuesta celular al antígeno Duffy se han asociado con el rechazo del trasplante renal.[91]​

Anemia falciforme[editar]

Los individuos negativos al antígeno Duffy con anemia de células falciformes tienden a sufrir un daño orgánico más severo que aquellos con el antígeno Duffy.[92]​ Los pacientes Duffy-positivos exhiben recuentos más altos de glóbulos blancos, neutrófilos polinucleares, niveles plasmáticos más altos de IL-8 y RANTES que los pacientes Duffy-negativos.[93]​

Medicina transfusional[editar]

Un receptor de sangre Duffy negativo puede tener una reacción a la transfusión si el donante es Duffy positivo.[43]​ Dado que la mayoría de las personas con Duffy negativo son descendientes de africanos, las donaciones de sangre de personas de origen negro africano son importantes para los bancos de transfusiones.

Datos de transfusión[editar]

Casi en su totalidad, el anticuerpo anti-Fy es del tipo IgG. Generalmente predomina la IgG1. IgM ocurre pero es inusual.

Comportamiento de anticuerpos[editar]

Anti-Fy a es un anticuerpo común, mientras que anti-Fy b es aproximadamente 20 veces menos común.[94]​[95]​ Son reactivos a la temperatura corporal y, por lo tanto, son clínicamente significativos, aunque normalmente no se unen al complemento. Los anticuerpos se adquieren a través de la exposición (embarazo o antecedente de transfusión de sangre) y la posterior aloinmunización. Muestran la dosis (reaccionan más fuertemente a las células homocigotas que a las células heterocigotas).[94]​

Reacciones transfusionales[editar]

Típicamente leve, pero puede ser grave, incluso fatal. Aunque estos suelen ocurrir inmediatamente, pueden ocurrir después de un retraso (de hasta 24 horas). Estas reacciones generalmente son causadas por anti-Fy a o anti-Fy b . anti-Fy3 puede causar reacciones transfusionales hemolíticas agudas o retardadas, pero solo en raras ocasiones. Anti-Fy5 también puede causar reacciones transfusionales hemolíticas retardadas.[94]​

Enfermedad hemolítica del feto y del recién nacido[editar]

La enfermedad hemolítica del feto y del recién nacido suele ser leve, pero rara vez puede ser grave. Casi siempre por anti-Fy a y raramente anti-Fyb o Fy3.

Referencias[editar]

  1. ↑ «ACKR1 gene». U.S. National Library of Medicine Genetics Home Reference. 17 de agosto de 2020. Consultado el 9 de septiembre de 2020. 
  2. ↑ a b Chaudhuri A, Polyakova J, Zbrzezna V, Williams K, Gulati S, Pogo AO (November 1993). «Cloning of glycoprotein D cDNA, which encodes the major subunit of the Duffy blood group system and the receptor for the Plasmodium vivax malaria parasite». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90 (22): 10793-7. Bibcode:1993PNAS...9010793C. PMC 47864. PMID 8248172. doi:10.1073/pnas.90.22.10793. 
  3. ↑ Tournamille C, Colin Y, Cartron JP, Le Van Kim C (June 1995). «Disruption of a GATA motif in the Duffy gene promoter abolishes erythroid gene expression in Duffy-negative individuals». Nat. Genet. 10 (2): 224-8. PMID 7663520. doi:10.1038/ng0695-224. 
  4. ↑ Kosaisavee V, Suwanarusk R, Chua AC, Kyle DE, Malleret B, Zhang R, Imwong M, Imerbsin R, Ubalee R, Sámano-Sánchez H, Yeung BK, Ong JJ, Lombardini E, Nosten F, Tan KS, Bifani P, Snounou G, Rénia L, Russell B (September 2017). «Strict tropism for CD71+/CD234+human reticulocytes limits the zoonotic potential ofPlasmodium cynomolgi». Blood 130 (11): 1357-1363. PMC 5600141. PMID 28698207. doi:10.1182/blood-2017-02-764787. 
  5. ↑ «Entrez Gene: Duffy antigen». 
  6. ↑ Cutbush M, Mollison PL, Parkin DM (4 de febrero de 1950). «A New Human Blood Group». Nature 165 (188–189): 188-189. Bibcode:1950Natur.165..188C. doi:10.1038/165188b0. 
  7. ↑ Tournamille C, Colin Y, Cartron JP, Le Van KC (Jun 1995). «Disruption of a GATA motif in the Duffy gene promoter abolishes erythroid gene expression in Duffy-negative individuals». Nat Genet 10 (2): 224-8. PMID 7663520. doi:10.1038/ng0695-224. 
  8. ↑ Yazdanbakhsh K, Rios M, Storry JR, Kosower N, Parasol N, Chaudhuri A, Reid ME (March 2000). «Molecular mechanisms that lead to reduced expression of duffy antigens». Transfusion 40 (3): 310-20. PMID 10738032. doi:10.1046/j.1537-2995.2000.40030310.x. 
  9. ↑ a b Hamblin MT, Di Rienzo A (May 2000). «Detection of the signature of natural selection in humans: evidence from the Duffy blood group locus». American Journal of Human Genetics 66 (5): 1669-79. PMC 1378024. PMID 10762551. doi:10.1086/302879. 
  10. ↑ Hamblin MT, Thompson EE, Di Rienzo A (February 2002). «Complex Signatures of Natural Selection at the Duffy Blood Group Locus». American Journal of Human Genetics 70 (2): 369-83. PMC 419988. PMID 11753822. doi:10.1086/338628. 
  11. ↑ Zimmerman PA, Woolley I, Masinde GL, Miller SM, McNamara DT, Hazlett F, Mgone CS, Alpers MP, Genton B, Boatin BA, Kazura JW (November 1999). «Emergence of FY*Anull in a Plasmodium vivax-endemic region of Papua New Guinea». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96 (24): 13973-7. Bibcode:1999PNAS...9613973Z. PMC 24175. PMID 10570183. doi:10.1073/pnas.96.24.13973. 
  12. ↑ Awasthi G, Dashb AP, Dasa A (September 2009). «Evolutionary insights into duffy gene in mammalian taxa with comparative genetic analysis». J Vector Borne Dis 46 (3): 230-6. PMID 19724088. 
  13. ↑ Tung J, Primus A, Bouley AJ, Severson TF, Alberts SC, Wray GA (July 2009). «Evolution of a malaria resistance gene in wild primates». Nature 460 (7253): 388-91. Bibcode:2009Natur.460..388T. PMID 19553936. doi:10.1038/nature08149. 
  14. ↑ Schmid P, Ravenell KR, Sheldon SL, Flegel WA (2011). «DARC alleles and Duffy phenotypes in African Americans». Transfusion 52 (6): 1260-1267. PMC 3374024. PMID 22082243. doi:10.1111/j.1537-2995.2011.03431.x. 
  15. ↑ Oliveira TY, Harris EE, Meyer D, Jue CK, Silva WA (2012). «Molecular evolution of a malaria resistance gene (DARC) in primates». Immunogenetics 64 (7): 497-505. PMID 22395823. doi:10.1007/s00251-012-0608-2. 
  16. ↑ Grodecka M, Bertrand O, Karolak E, Lisowski M, Waśniowska K (2012). «One-step immunopurification and lectinochemical characterization of the Duffy atypical chemokine receptor from human erythrocytes». Glycoconj. J. 29 (2–3): 93-105. PMC 3311851. PMID 22246380. doi:10.1007/s10719-011-9367-9. 
  17. ↑ a b Woolley IJ, Hotmire KA, Sramkoski RM, Zimmerman PA, Kazura JW (August 2000). «Differential expression of the duffy antigen receptor for chemokines according to RBC age and FY genotype». Transfusion 40 (8): 949-53. PMID 10960522. doi:10.1046/j.1537-2995.2000.40080949.x. 
  18. ↑ Horuk R, Martin AW, Wang Z, Schweitzer L, Gerassimides A, Guo H, Lu Z, Hesselgesser J, Perez HD, Kim J, Parker J, Hadley TJ, Peiper SC (1997). «Expression of chemokine receptors by subsets of neurons in the central nervous system». Journal of Immunology 158 (6): 2882-90. PMID 9058825. 
  19. ↑ Hadley TJ, Lu ZH, Wasniowska K, Martin AW, Peiper SC, Hesselgesser J, Horuk R (1994). «Postcapillary venule endothelial cells in kidney express a multispecific chemokine receptor that is structurally and functionally identical to the erythroid isoform, which is the Duffy blood group antigen». J. Clin. Invest. 94 (3): 985-91. PMC 295143. PMID 8083383. doi:10.1172/JCI117465. 
  20. ↑ Rot A, Gutjahr JC, Biswas A, Aslani M, Hub E, Thiriot A, von Andrian UH, Megens RT, Weber C, Duchene J (2022). «Murine bone marrow macrophages and human monocytes do not express atypical chemokine receptor 1». Cell Stem Cell 29 (7): 1013-1015. PMID 35803222. doi:10.1016/j.stem.2021.11.010. 
  21. ↑ Peiper SC, Wang ZX, Neote K, Martin AW, Showell HJ, Conklyn MJ, Ogborne K, Hadley TJ, Lu ZH, Hesselgesser J, Horuk R (April 1995). «The Duffy antigen/receptor for chemokines (DARC) is expressed in endothelial cells of Duffy negative individuals who lack the erythrocyte receptor». J. Exp. Med. 181 (4): 1311-7. PMC 2191961. PMID 7699323. doi:10.1084/jem.181.4.1311. 
  22. ↑ Chaudhuri A, Zbrzezna V, Polyakova J, Pogo AO, Hesselgesser J, Horuk R (1994). «Expression of the Duffy antigen in K562 cells. Evidence that it is the human erythrocyte chemokine receptor». J. Biol. Chem. 269 (11): 7835-8. PMID 8132497. doi:10.1016/S0021-9258(17)37123-5. 
  23. ↑ Horuk R, Wang ZX, Peiper SC, Hesselgesser J (1994). «Identification and characterization of a promiscuous chemokine-binding protein in a human erythroleukemic cell line». J. Biol. Chem. 269 (26): 17730-3. PMID 7517400. doi:10.1016/S0021-9258(17)32501-2. 
  24. ↑ Horuk R, Chitnis CE, Darbonne WC, Colby TJ, Rybicki A, Hadley TJ, Miller LH (August 1993). «A receptor for the malarial parasite Plasmodium vivax: the erythrocyte chemokine receptor». Science 261 (5125): 1182-4. Bibcode:1993Sci...261.1182H. PMID 7689250. doi:10.1126/science.7689250. 
  25. ↑ McMorran BJ, Wieczorski L, Drysdale KE, Chan JA, Huang HM, Smith C, Mitiku C, Beeson JG, Burgio G, Foote SJ (2012). «Platelet factor 4 and Duffy antigen required for platelet killing of Plasmodium falciparum». Science 338 (6112): 1348-51. Bibcode:2012Sci...338.1348M. PMID 23224555. doi:10.1126/science.1228892. 
  26. ↑ Lu ZH, Wang ZX, Horuk R, Hesselgesser J, Lou YC, Hadley TJ, Peiper SC (1995). «The promiscuous chemokine binding profile of the Duffy antigen/receptor for chemokines is primarily localized to sequences in the amino-terminal domain». J. Biol. Chem. 270 (44): 26239-45. PMID 7592830. doi:10.1074/jbc.270.44.26239. 
  27. ↑ Chaudhuri A, Zbrzezna V, Polyakova J, Pogo AO, Hesselgesser J, Horuk R (March 1994). «Expression of the Duffy antigen in K562 cells. Evidence that it is the human erythrocyte chemokine receptor». J. Biol. Chem. 269 (11): 7835-8. PMID 8132497. doi:10.1016/S0021-9258(17)37123-5. 
  28. ↑ Fukuma N, Akimitsu N, Hamamoto H, Kusuhara H, Sugiyama Y, Sekimizu K (2003). «A role of the Duffy antigen for the maintenance of plasma chemokine concentrations». Biochem. Biophys. Res. Commun. 303 (1): 137-9. PMID 12646177. doi:10.1016/S0006-291X(03)00293-6. 
  29. ↑ Lee JS, Frevert CW, Wurfel MM, Peiper SC, Wong VA, Ballman KK, Ruzinski JT, Rhim JS, Martin TR, Goodman RB (2003). «Duffy antigen facilitates movement of chemokine across the endothelium in vitro and promotes neutrophil transmigration in vitro and in vivo». Journal of Immunology 170 (10): 5244-51. PMC 4357319. PMID 12734373. doi:10.4049/jimmunol.170.10.5244. 
  30. ↑ Dawson TC, Lentsch AB, Wang Z, Cowhig JE, Rot A, Maeda N, Peiper SC (2000). «Exaggerated response to endotoxin in mice lacking the Duffy antigen/receptor for chemokines (DARC)». Blood 96 (5): 1681-4. PMID 10961863. doi:10.1182/blood.V96.5.1681. 
  31. ↑ Patterson AM, Siddall H, Chamberlain G, Gardner L, Middleton J (2002). «Expression of the duffy antigen/receptor for chemokines (DARC) by the inflamed synovial endothelium». J. Pathol. 197 (1): 108-16. PMID 12081195. doi:10.1002/path.1100. 
  32. ↑ Liu XH, Hadley TJ, Xu L, Peiper SC, Ray PE (1999). «Up-regulation of Duffy antigen receptor expression in children with renal disease». Kidney Int. 55 (4): 1491-500. PMID 10201015. doi:10.1046/j.1523-1755.1999.00385.x. 
  33. ↑ Rot A (2005). «Contribution of Duffy antigen to chemokine function». Cytokine Growth Factor Rev. 16 (6): 687-94. PMID 16054417. doi:10.1016/j.cytogfr.2005.05.011. 
  34. ↑ Segerer S, Regele H, MacK M, Kain R, Cartron JP, Colin Y, Kerjaschki D, Schlöndorff D (2000). «The Duffy antigen receptor for chemokines is up-regulated during acute renal transplant rejection and crescentic glomerulonephritis». Kidney Int. 58 (4): 1546-56. PMID 11012889. doi:10.1046/j.1523-1755.2000.00316.x. 
  35. ↑ Segerer S, Cui Y, Eitner F, Goodpaster T, Hudkins KL, Mack M, Cartron JP, Colin Y, Schlondorff D, Alpers CE (2001). «Expression of chemokines and chemokine receptors during human renal transplant rejection». Am. J. Kidney Dis. 37 (3): 518-31. PMID 11228176. doi:10.1016/S0272-6386(01)80009-3. 
  36. ↑ Brühl H, Vielhauer V, Weiss M, Mack M, Schlöndorff D, Segerer S (2005). «Expression of DARC, CXCR3 and CCR5 in giant cell arteritis». Rheumatology 44 (3): 309-13. PMID 15572394. doi:10.1093/rheumatology/keh485. 
  37. ↑ Middleton J, Americh L, Gayon R, Julien D, Mansat M, Mansat P, Anract P, Cantagrel A, Cattan P, Reimund JM, Aguilar L, Amalric F, Girard JP (2005). «A comparative study of endothelial cell markers expressed in chronically inflamed human tissues: MECA-79, Duffy antigen receptor for chemokines, von Willebrand factor, CD31, CD34, CD105 and CD146». J. Pathol. 206 (3): 260-8. PMID 15887283. doi:10.1002/path.1788. 
  38. ↑ Segerer S, Böhmig GA, Exner M, Colin Y, Cartron JP, Kerjaschki D, Schlöndorff D, Regele H (2003). «When renal allografts turn DARC». Transplantation 75 (7): 1030-4. PMID 12698093. doi:10.1097/01.TP.0000054679.91112.6F. 
  39. ↑ Pruenster M, Rot A (2006). «Throwing light on DARC». Biochem. Soc. Trans. 34 (Pt 6): 1005-8. PMID 17073738. doi:10.1042/BST0341005. 
  40. ↑ Chakera A, Seeber RM, John AE, Eidne KA, Greaves DR (May 2008). «The duffy antigen/receptor for chemokines exists in an oligomeric form in living cells and functionally antagonizes CCR5 signaling through hetero-oligomerization». Mol. Pharmacol. 73 (5): 1362-70. PMID 18230715. doi:10.1124/mol.107.040915. 
  41. ↑ Pruenster M, Mudde L, Bombosi P, Dimitrova S, Zsak M, Middleton J, Richmond A, Graham GJ, Segerer S, Nibbs RJ, Rot A (January 2009). «The Duffy antigen receptor for chemokines transports chemokines and supports their promigratory activity». Nat. Immunol. 10 (1): 101-8. PMC 3205989. PMID 19060902. doi:10.1038/ni.1675. 
  42. ↑ Levinson, Warren (2004). Medical microbiology & immunology: examination & board review. New York: Lange Medical Books/McGraw-Hill. ISBN 978-0-07-143199-6. 
  43. ↑ a b Nickel RG, Willadsen SA, Freidhoff LR, Huang SK, Caraballo L, Naidu RP, Levett P, Blumenthal M, Banks-Schlegel S, Bleecker E, Beaty T, Ober C, Barnes KC (August 1999). «Determination of Duffy genotypes in three populations of African descent using PCR and sequence-specific oligonucleotides». Hum. Immunol. 60 (8): 738-42. PMID 10439320. doi:10.1016/S0198-8859(99)00039-7. 
  44. ↑ Miller LH, Mason SJ, Clyde DF, McGinniss MH (August 1976). «The resistance factor to Plasmodium vivax in blacks. The Duffy-blood-group genotype, FyFy». N. Engl. J. Med. 295 (6): 302-4. PMID 778616. doi:10.1056/NEJM197608052950602. 
  45. ↑ Estalote AC, Proto-Siqueira R, Silva WA, Zago MA, Palatnik M (2005). «The mutation G298A-->Ala100Thr on the coding sequence of the Duffy antigen/chemokine receptor gene in non-caucasian Brazilians». Genet. Mol. Res. 4 (2): 166-73. PMID 16110438. 
  46. ↑ Bauduer F, Feingold J, Lacombe D (October 2005). «The Basques: review of population genetics and Mendelian disorders». Hum. Biol. 77 (5): 619-37. PMID 16596943. doi:10.1353/hub.2006.0001. 
  47. ↑ Ferri G, Bini C, Ceccardi S, Ingravallo F, Lugaresi F, Pelotti S (March 2006). «Minisequencing-based genotyping of Duffy and ABO blood groups for forensic purposes». J. Forensic Sci. 51 (2): 357-60. PMID 16566771. doi:10.1111/j.1556-4029.2006.00058.x. 
  48. ↑ Das MK, Singh SS, Adak T, Vasantha K, Mohanty D (June 2005). «The Duffy blood groups of Jarawas - the primitive and vanishing tribe of Andaman and Nicobar Islands of India». Transfus Med 15 (3): 237-40. PMID 15943709. doi:10.1111/j.1365-3148.2005.00583.x. 
  49. ↑ Kobyliansky E, Micle S, Goldschmidt-Nathan M, Arensburg B, Nathan H (1980). «Duffy, Kell and P blood group systems in some Jewish populations of Israel». Acta Anthropogenet 4 (3–4): 173-9. PMID 7346047. 
  50. ↑ Parasol N, Cohen N, Zemishlany Z, Lerer B, Kosower NS (April 2001). «Duffy antigen/receptor for chemokines (DARC): genotypes in Ashkenazi and non-Ashkenazi Jews in Israel». Hum. Biol. 73 (2): 307-13. PMID 11446431. doi:10.1353/hub.2001.0024. 
  51. ↑ Yan L, Zhu F, Fu Q, He J (2020). «ABO, Rh, MNS, Duffy, Kidd, Yt, Scianna, and Colton blood group systems in indigenous Chinese». Immunohematology 21 (1): 10-4. PMID 15783300. doi:10.21307/immunohematology-2019-386. 
  52. ↑ Chiaroni J, Touinssi M, Frassati C, Degioanni A, Gibert M, Reviron D, Mercier P, Boëtsch G (August 2004). «Genetic characterization of the population of Grande Comore Island (Njazidja) according to major blood groups». Hum. Biol. 76 (4): 527-41. PMID 15754970. doi:10.1353/hub.2004.0053. 
  53. ↑ Thakral B, Saluja K, Sharma RR, Marwaha N (June 2010). «Phenotype frequencies of blood group systems (Rh, Kell, Kidd, Duffy, MNS, P, Lewis, and Lutheran) in north Indian blood donors». Transfus Apher Sci 43 (1): 17-22. PMID 20558108. doi:10.1016/j.transci.2010.05.006. 
  54. ↑ Rosenberg R (May 2007). «Plasmodium vivax in Africa: hidden in plain sight?». Trends in Parasitology 23 (5): 193-6. PMID 17360237. doi:10.1016/j.pt.2007.02.009. 
  55. ↑ Mathews HM, Armstrong JC (March 1981). «Duffy blood types and vivax malaria in Ethiopia». The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 30 (2): 299-303. PMID 7015888. doi:10.4269/ajtmh.1981.30.299. 
  56. ↑ Sellami MH, Kaabi H, Midouni B, Dridi A, Mojaat N, Boukef MK, Hmida S (2008). «Duffy blood group system genotyping in an urban Tunisian population». Annals of Human Biology 35 (4): 406-15. PMID 18608113. doi:10.1080/03014460802082127. 
  57. ↑ Lepers JP, Simonneau M, Charmot G (1986). «[The Duffy blood group system in the population of Nouakchott (Mauritania)]». Bull Soc Pathol Exot Filiales (en francés) 79 (3): 417-20. PMID 3769126. 
  58. ↑ Howes RE, Patil AP, Piel FB, Nyangiri OA, Kabaria CW, Gething PW, Zimmerman PA, Barnadas C, Beall CM, Gebremedhin A, Ménard D, Williams TN, Weatherall DJ, Hay SI (April 2011). «The global distribution of the Duffy blood group». Nat Commun 2 (4): 266. Bibcode:2011NatCo...2..266H. PMC 3074097. PMID 21468018. doi:10.1038/ncomms1265. 
  59. ↑ Keramati MR, Shakibaei H, Kheiyyami MI, Ayatollahi H, Badiei Z, Samavati M, Sadeghian MH (October 2011). «Blood group antigens frequencies in the northeast of Iran». Transfus. Apher. Sci. 45 (2): 133-6. PMID 21840761. doi:10.1016/j.transci.2011.07.006. 
  60. ↑ a b c Ryan JR, Stoute JA, Amon J, Dunton RF, Mtalib R, Koros J, Owour B, Luckhart S, Wirtz RA, Barnwell JW, Rosenberg R (October 2006). «Evidence for transmission of Plasmodium vivax among a duffy antigen negative population in Western Kenya». Am. J. Trop. Med. Hyg. 75 (4): 575-81. PMID 17038676. doi:10.4269/ajtmh.2006.75.575. 
  61. ↑ Ménard D, Barnadas C, Bouchier C, Henry-Halldin C, Gray LR, Ratsimbasoa A, Thonier V, Carod JF, Domarle O, Colin Y, Bertrand O, Picot J, King CL, Grimberg BT, Mercereau-Puijalon O, Zimmerman PA (March 2010). «Plasmodium vivax clinical malaria is commonly observed in Duffy-negative Malagasy people». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (13): 5967-71. Bibcode:2010PNAS..107.5967M. PMC 2851935. PMID 20231434. doi:10.1073/pnas.0912496107. 
  62. ↑ Mendes C, Dias F, Figueiredo J, Mora VG, Cano J, de Sousa B, do Rosário VE, Benito A, Berzosa P, Arez AP (June 2011). «Duffy Negative Antigen Is No Longer a Barrier to Plasmodium vivax – Molecular Evidences from the African West Coast (Angola and Equatorial Guinea)». En Franco-Paredes, Carlos, ed. PLOS Negl Trop Dis 5 (6): e1192. PMC 3119644. PMID 21713024. doi:10.1371/journal.pntd.0001192. 
  63. ↑ Wurtz N, Mint Lekweiry K, Bogreau H, Pradines B, Rogier C, Ould Mohamed Salem Boukhary A, Hafid JE, Ould Ahmedou Salem MS, Trape JF, Basco LK, Briolant S (2011). «Vivax malaria in Mauritania includes infection of a Duffy-negative individual». Malar. J. 10: 336. PMC 3228859. PMID 22050867. doi:10.1186/1475-2875-10-336. 
  64. ↑ Cavasini CE, de Mattos LC, Couto AA, Couto VS, Gollino Y, Moretti LJ, Bonini-Domingos CR, Rossit AR, Castilho L, Machado RL (2007). «Duffy blood group gene polymorphisms among malaria vivax patients in four areas of the Brazilian Amazon region». Malar. J. 6: 167. PMC 2244634. PMID 18093292. doi:10.1186/1475-2875-6-167. 
  65. ↑ Cavasini CE, Mattos LC, Couto AA, Bonini-Domingos CR, Valencia SH, Neiras WC, Alves RT, Rossit AR, Castilho L, Machado RL (October 2007). «Plasmodium vivax infection among Duffy antigen-negative individuals from the Brazilian Amazon region: an exception?». Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 101 (10): 1042-4. PMID 17604067. doi:10.1016/j.trstmh.2007.04.011. 
  66. ↑ Culleton R, Ndounga M, Zeyrek FY, Coban C, Casimiro PN, Takeo S, Tsuboi T, Yadava A, Carter R, Tanabe K (November 2009). «Evidence for the transmission of Plasmodium vivax in the Republic of the Congo, West Central Africa». J. Infect. Dis. 200 (9): 1465-9. PMID 19803728. doi:10.1086/644510. Archivado desde el original el 3 de noviembre de 2018. Consultado el 6 de enero de 2023. 
  67. ↑ Dhorda M, Nyehangane D, Rénia L, Piola P, Guerin PJ, Snounou G (2011). «Transmission of Plasmodium vivax in south-western Uganda: report of three cases in pregnant women». PLOS ONE 6 (5): e19801. Bibcode:2011PLoSO...619801D. PMC 3094453. PMID 21603649. doi:10.1371/journal.pone.0019801. 
  68. ↑ Carvalho TA, Queiroz MG, Cardoso GL, Diniz IG, Silva AN, Pinto AY, Guerreiro JF (December 2012). «Plasmodium vivax infection in Anajas, State of Para: no differential resistance profile among Duffy-negative and Duffy-positive individuals». Malar. J. 11 (1): 430. PMC 3544589. PMID 23259672. doi:10.1186/1475-2875-11-430. 
  69. ↑ McHenry AM, Barnwell JW, Adams JH (October 2009). «Plasmodium vivax DBP binding to Aotus nancymaae erythrocytes is Duffy antigen dependent». J. Parasitol. 96 (1): 225-227. PMC 2883003. PMID 19799492. doi:10.1645/GE-2281.1. 
  70. ↑ Albuquerque SR, Cavalcante Fde O, Sanguino EC, Tezza L, Chacon F, Castilho L, dos Santos MC (February 2010). «FY polymorphisms and vivax malaria in inhabitants of Amazonas State, Brazil». Parasitol Res 106 (5): 1049-53. PMID 20162434. doi:10.1007/s00436-010-1745-x. 
  71. ↑ King CL, Adams JH, Xianli J, Grimberg BT, McHenry AM, Greenberg LJ, Siddiqui A, Howes RE, da Silva-Nunes M, Ferreira MU, Zimmerman PA (November 2011). «Fya/Fyb antigen polymorphism in human erythrocyte Duffy antigen affects susceptibility to Plasmodium vivax malaria». Proc Natl Acad Sci U S A 108 (50): 20113-8. Bibcode:2011PNAS..10820113K. PMC 3250126. PMID 22123959. doi:10.1073/pnas.1109621108. 
  72. ↑ McMorran BJ, Wieczorski L, Drysdale KE, Chan JA, Huang HM, Smith C, Mitiku C, Beeson JG, Burgio G, Foote SJ (December 2012). «Platelet factor 4 and Duffy antigen required for platelet killing of Plasmodium falciparum». Science 338 (6112): 1348-51. Bibcode:2012Sci...338.1348M. PMID 23224555. doi:10.1126/science.1228892. 
  73. ↑ Sampath S, Carrico C, Janes J, Gurumoorthy S, Gibson C, Melcher M, Chitnis CE, Wang R, Schief WR, Smith JD (June 2013). «Glycan Masking of Plasmodium vivax Duffy Binding Protein for Probing Protein Binding Function and Vaccine Development». PLOS Pathog. 9 (6): e1003420. PMC 3681752. PMID 23853575. doi:10.1371/journal.ppat.1003420. 
  74. ↑ Kano FS, de Souza AM, de Menezes Torres L, Costa MA, Souza-Silva FA, Sanchez BA, Fontes CJ, Soares IS, de Brito CF, Carvalho LH, Sousa TN (September 2018). «Susceptibility to Plasmodium vivax malaria associated with DARC (Duffy antigen) polymorphisms is influenced by the time of exposure to malaria». Scientific Reports 8 (1): 13851. Bibcode:2018NatSR...813851K. PMC 6138695. PMID 30218021. doi:10.1038/s41598-018-32254-z. 
  75. ↑ Vergara C, Tsai YJ, Grant AV, Rafaels N, Gao L, Hand T, Stockton M, Campbell M, Mercado D, Faruque M, Dunston G, Beaty TH, Oliveira RR, Ponte EV, Cruz AA, Carvalho E, Araujo MI, Watson H, Schleimer RP, Caraballo L, Nickel RG, Mathias RA, Barnes KC (November 2008). «Gene Encoding Duffy Antigen/Receptor for Chemokines Is Associated with Asthma and IgE in Three Populations». Am. J. Respir. Crit. Care Med. 178 (10): 1017-22. PMC 2582596. PMID 18827265. doi:10.1164/rccm.200801-182OC. 
  76. ↑ a b c Duchene J, Novitzky-Basso I, Thiriot A, Casanova-Acebes M, Bianchini M, Etheridge SL, Hub E, Nitz K, Artinger K, Eller K, Caamaño J, Rülicke T, Moss P, Megens RT, von Andrian UH, Hidalgo A, Weber C, Rot A (May 2017). «Atypical chemokine receptor 1 on nucleated erythroid cells regulates hematopoiesis». Nature Immunology 18 (7): 753-761. PMC 5480598. PMID 28553950. doi:10.1038/ni.3763. 
  77. ↑ a b «How Ancestry Shapes Our Immune Cells». 
  78. ↑ Reich D, Nalls MA, Kao WH, Akylbekova EL, Tandon A, Patterson N, Mullikin J, Hsueh WC, Cheng CY, Coresh J, Boerwinkle E, Li M, Waliszewska A, Neubauer J, Li R, Leak TS, Ekunwe L, Files JC, Hardy CL, Zmuda JM, Taylor HA, Ziv E, Harris TB, Wilson JG (January 2009). «Reduced Neutrophil Count in People of African Descent Is Due To a Regulatory Variant in the Duffy Antigen Receptor for Chemokines Gene». En Visscher, Peter M., ed. PLOS Genet. 5 (1): e1000360. PMC 2628742. PMID 19180233. doi:10.1371/journal.pgen.1000360. 
  79. ↑ Zijlstra A, Quigley JP (September 2006). «The DARC side of metastasis: shining a light on KAI1-mediated metastasis suppression in the vascular tunnel». Cancer Cell 10 (3): 177-8. PMID 16959609. doi:10.1016/j.ccr.2006.08.012. 
  80. ↑ Wang J, Ou ZL, Hou YF, Luo JM, Shen ZZ, Ding J, Shao ZM (November 2006). «Enhanced expression of Duffy antigen receptor for chemokines by breast cancer cells attenuates growth and metastasis potential». Oncogene 25 (54): 7201-11. PMID 16785997. doi:10.1038/sj.onc.1209703. 
  81. ↑ a b He W, Neil S, Kulkarni H, Wright E, Agan BK, Marconi VC, Dolan MJ, Weiss RA, Ahuja SK (July 2008). «Duffy Antigen Receptor for Chemokines Mediates trans-Infection of HIV-1 from Red Blood Cells to Target Cells and Affects HIV-AIDS Susceptibility». Cell Host Microbe 4 (1): 52-62. PMC 2562426. PMID 18621010. doi:10.1016/j.chom.2008.06.002. 
  82. ↑ Kulkarni H, Marconi VC, He W, Landrum ML, Okulicz JF, Delmar J, Kazandjian D, Castiblanco J, Ahuja SS, Wright EJ, Weiss RA, Clark RA, Dolan MJ, Ahuja SK (July 2009). «The Duffy-null state is associated with a survival advantage in leukopenic HIV-infected persons of African ancestry». Blood 114 (13): 2783-92. PMC 2927046. PMID 19620399. doi:10.1182/blood-2009-04-215186. 
  83. ↑ Voruganti VS, Laston S, Haack K, Mehta NR, Smith CW, Cole SA, Butte NF, Comuzzie AG (September 2012). «Genome-wide association replicates the association of Duffy antigen receptor for chemokines (DARC) polymorphisms with serum monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) levels in Hispanic children». Cytokine 60 (3): 634-8. PMC 3501981. PMID 23017229. doi:10.1016/j.cyto.2012.08.029. 
  84. ↑ Sidore C, Busonero F, Maschio A, Porcu E, Naitza S, Zoledziewska M, Mulas A, Pistis G, Steri M, Danjou F, Kwong A, Ortega Del Vecchyo VD, Chiang CW, Bragg-Gresham J, Pitzalis M, Nagaraja R, Tarrier B, Brennan C, Uzzau S, Fuchsberger C, Atzeni R, Reinier F, Berutti R, Huang J, Timpson NJ, Toniolo D, Gasparini P, Malerba G, Dedoussis G, Zeggini E, Soranzo N, Jones C, Lyons R, Angius A, Kang HM, Novembre J, Sanna S, Schlessinger D, Cucca F, Abecasis GR (2015). «Genome sequencing elucidates Sardinian genetic architecture and augments association analyses for lipid and blood inflammatory markers». Nature Genetics 47 (11): 1272-81. PMC 4627508. PMID 26366554. doi:10.1038/ng.3368. 
  85. ↑ Smith E, McGettrick HM, Stone MA, Shaw JS, Middleton J, Nash GB, Buckley CD, Ed Rainger G (July 2008). «Duffy antigen receptor for chemokines and CXCL5 are essential for the recruitment of neutrophils in a multicellular model of rheumatoid arthritis synovium». Arthritis and Rheumatism 58 (7): 1968-73. PMC 2821686. PMID 18576313. doi:10.1002/art.23545. 
  86. ↑ Geleff S, Draganovici D, Jaksch P, Segerer S (July 2009). «The role of chemokine receptors in acute lung allograft rejection». Eur. Respir. J. 35 (1): 167-75. PMID 19608592. doi:10.1183/09031936.00042309. 
  87. ↑ Guler N, Turgut M, Ozatli D, Turgut Y, Gokce AK, Koc S, Albayrak D (March 2009). «High ratio of Duffy (a+b+) phenotype in patients with multiple myeloma compared to healthy controls». Hematol Oncol 27 (1): 50-1. PMID 19206111. doi:10.1002/hon.887. 
  88. ↑ Lee JS, Frevert CW, Thorning DR, Segerer S, Alpers CE, Cartron JP, Colin Y, Wong VA, Martin TR, Goodman RB (February 2003). «Enhanced expression of Duffy antigen in the lungs during suppurative pneumonia». J. Histochem. Cytochem. 51 (2): 159-66. PMID 12533524. doi:10.1177/002215540305100204. 
  89. ↑ Elson JK, Beebe-Dimmer JL, Morgenstern H, Chilkuri M, Blanchard J, Lentsch AB (July 2010). «The Duffy Antigen/Receptor for Chemokines (DARC) and Prostate-Cancer Risk among Jamaican Men». J Immigr Minor Health 13 (1): 36-41. PMC 3017736. PMID 20596779. doi:10.1007/s10903-010-9330-z. 
  90. ↑ Legge SE, Pardiñas AF, Helthuis M, Jansen JA, Jollie K, Knapper S, MacCabe JH, Rujescu D, Collier DA, O'Donovan MC, Owen MJ, Walters JT (March 2019). «A genome-wide association study in individuals of African ancestry reveals the importance of the Duffy-null genotype in the assessment of clozapine-related neutropenia». Molecular Psychiatry 24 (3): 328-337. PMID 30647433. doi:10.1038/s41380-018-0335-7. 
  91. ↑ Watorek E, Boratyńska M, Hałoń A, Klinger M (2008). «Anti-Fya antibodies as the cause of an unfortunate post-transplant course in renal transplant recipient». Ann. Transplant. 13 (1): 48-52. PMID 18344944. 
  92. ↑ Afenyi-Annan A, Kail M, Combs MR, Orringer EP, Ashley-Koch A, Telen MJ (May 2008). «Lack of Duffy antigen expression is associated with organ damage in patients with sickle cell disease». Transfusion 48 (5): 917-24. PMID 18248572. doi:10.1111/j.1537-2995.2007.01622.x. 
  93. ↑ Nebor D, Durpes MC, Mougenel D, Mukisi-Mukaza M, Elion J, Hardy-Dessources MD, Romana M (July 2010). «Association between Duffy antigen receptor for chemokines expression and levels of inflammation markers in sickle cell anemia patients». Clin. Immunol. 136 (1): 116-22. PMID 20347396. doi:10.1016/j.clim.2010.02.023. 
  94. ↑ a b c Roback, John; Combs, Martha Rae; Grossman, Brenda; Hillyer, Christopher (2008). AABB Technical Manual (16th edición). Bethesda: AABB Press. 
  95. ↑ Mollison's Blood Transfusion in Clinical Medicine (11th edición). Oxford: Blackwell Publishing. 2005. 
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