Daphnia pulex

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Daphnia pulex
Daphnia pulex.png
Clasificación científica
Reino: Animalia
Filo: Arthropoda
Subfilo: Crustacea
Clase: Branchiopoda
Orden: Cladocera
Familia: Daphniidae
Género: Daphnia
Subgénero: Daphnia
Especie: D. pulex
(Linnaeus, 1758[1] [Nota 1]

Daphnia pulex es es la especie más común dentro de las pulgas de agua.[3] Tiene una distribución geográfica muy amplia: se la puede encontrar en toda América, Europa y Australia.[4]

Es una especie muy utilizada como modelo experimental; y además es el primer crustáceo del cual se ha secuenciado su genoma.

Descripción[editar]

A pesar de que Daphnia pulex es un artrópodo, sus segmentos corporales son difíciles de reconocer. Se pueden distinguir por los apéndices que poseen (un par de apéndices por cada segmento) y también estudiando la antomía interna.[5] La cabeza se distingue claramente y se forma a partir de la fusión de seis segmentos en el estadio embrional.[5] En ella destacan la boca y dos pares de antenas, el segundo de los cuales ha aumentado su tamaño para convertirse en poderosos apéndices natatorios. No existe una división clara entre tórax y abdomen, los cuales en conjunto poseen 5 pares de apéndices.[5] El caparazón que rodea al animal se extiende en sentido posterior terminando en una espina de longitud variable.[6]

Ecología[editar]

Daphnia pulex puede vivir en una gran variedad de hábitats acuáticos, aunque se encuentra preferentemente en charcas pequeñas y con iluminación moderada.[7]

No tiene prácticamente pigmentación alguna en circunstancias oligotróficas en las que hay escasez de nutrientes. Por el contrario, en condiciones eutróficas D. pulex se vuelve de un color rojo intenso, debido al aumento en la producción de hemoglobina.[7]

Depredadores[editar]

Daphnia constituye una presa importante para depredadores vertebrados e invertebrados. Se ha estudiado en detalle la influencia de los depredadores sobre la dinámica de poblaciones,[8] distribución y otros aspectos ecológicos[9] de la especie D. pulex , comprobándose que juega un papel fundamental . Además de los efectos directos de la acción depredadora sobre el tamaño de las poblaciones de D. pulex existe una influencia evolutiva sobre el fenotipo que puede producir efectos opuestos según las circunstancias: los ejemplares de D. pulex de mayor tamaño son más visibles para los depredadores vertebrados, mientras que los depredadores invertebrados son incapaces de ingerirlos. Como resultado de esto, el fenotipo de mayor tamaño se ve favorecido y prevalece en presencia de depredadores invertebrados mientras que cuando existen depredadores vertebrados tienen ventaja los individuos más pequeños.

Como en el caso de otras especies de Daphnia, D. pulex exhibe una considerable plasticidad fenotípica, cambiando su morfología al detectar la presencia de depredadores, como por ejemplo las larvas del díptero Chaoborus que se alimentan de los individuos en estadios juveniles de D. pulex. Las larvas de Chaoborus producen feromonas (kairomonas) que delatan su presencia al ser reconocidas por los juveniles de D.pulex, que responden desarrollando unas protuberancias afiladas (“dientes de cuello”) en la siguiente muda de caparazón.[10] El uso de los dientes de cuello como estrategia de defensa aumenta la supervivencia de D. pulex frente a este depredador invertebrado, pero a costa de alargar su período de desarrollo.[11]

Respuesta a condiciones ecológicas adversas[editar]

La estequiometría ecológica, entendida como la disponibilidad y el balance de nutrientes, ejerce una gran influencia en las características de Daphnia pulex.[12] La escasez de nutrientes provoca una reducción en el tamaño corporal y en la tasa de crecimiento, las cuales, como se ha mencionado antes, también son muy importantes en la relación de Daphnia con sus depredadores. En este sentido, Daphnia pulex constituye una especie modelo muy importante para investigaciones relacionadas con la estequiometría ecológica, y se ha utilizado por ejemplo para estudiar las relaciones entre la abundancia de fitoplancton (algas microscópicas que constituye el alimento principal de D. pulex), la capacidad de fijación del carbono, la intensidad de luz natural (comparando poblaciones de charcas con árboles cercanos con otras que están a pleno sol), los niveles de nutrientes inorgánicos y el tamaño corporal de D. pulex.[13]

Genoma[editar]

Daphnia pulex es el primer crustáceo cuyo genoma ha sido secuenciado.[14] [15] Su genoma contiene 31.000 genes – 8.000 más que en el genoma humano – como resultado de una extensa duplicación génica.[16]

Una de las características más sorprendentes del genoma de D. pulex es su naturaleza compacta: a pesar de tener un tañmaño de 200 Mb (aproximadamente 16 veces más pequeño que el genoma humano, el cual tiene 3.200 Mb); en sus 12 cromosomas se predice que hay al menos 30.907 genes codificantes de proteínas, más que los 20.000-25.000 predichos para el genoma humano.[16]

Este empaquetamiento tan eficiente se obtiene gracias a un tamaño intrónico muy pequeño. En efecto, mientras que la longitud media por proteína en D. pulex es muy similar a la de Drosophila, la longitud media por gen es 1000 bp más corta en D. pulex. Según estudios basado en EST, la longitud media por intrón en los genes de D. pulex es de 170 bp.[16]

Por otra parte, la densidad de intrones a lo largo del genoma de D. pulex es similar a la de Apis mellifera, la cual a su vez es el doble que la de Drosophila.[16]

El genoma de D. pulex ha experimentado una intensa duplicación génica seguida de una rápida divergencia y reordenamiento en clústeres de los genes parálogos. Como resultado, alrededor del 20% del catálogo de genes de D. pulex está formado por clusteres de 3-80 parálogos dispuestos en tandem, muchos de los cuales son eco-sensibles, es decir que se expresan de modo diferencial en respuesta a condiciones cambiantes del entorno, por ejemplo estrés biótico o abiótico o bien fluctuaciones en los niveles de oxígeno y/o luz.[16]

Notas[editar]

  1. Algunas fuentes señalan también la contribución de "Leydig, 1860",[2] o "(De Geer, 1776)".

Referencias[editar]

  1. Gregorio Fernandez-Leborans & Maria Luisa Tato-Porto (2000). «A review of the species of protozoan epibionts on crustaceans. II. Suctorian ciliates». Crustaceana 73 (10):  pp. 1205–1237. doi:10.1163/156854000505209. 
  2. Sistema Integrado de Información Taxonómica. «'Daphnia pulex Leydig, 1860 (TSN 83874)» (en inglés).
  3. Carrie Miller. «Daphnia pulex». Animal Diversity Web. University of Michigan.
  4. «Daphnia pulex». An Image-Based Key To The Zooplankton Of The Northeast (USA). University of New Hampshire.
  5. a b c Alexander Ivanovitch Petrunkevitch (1916). «Daphnia pulex». Morphology of Invertebrate Types. pp. 113–121. ISBN 978-0-554-71763-0. 
  6. Clarence Luther Herrick (2009). «Section 6». A Final Report on the Crustacea of Minnesota. General Books LLC. pp. 21–66. ISBN 978-1-150-02333-0. 
  7. a b Plantilla:Cita web angel gabriel rosas mendez escuela 1°c 1 3 9
  8. Barbara Leoni & Letizia Garibaldi (2009). «Population dynamics of Chaoborus flavicans and Daphnia spp.: effects on a zooplankton community in a volcanic eutrophic lake with naturally high metal concentrations (L. Monticchio Grande, Southern Italy)» (PDF). Journal of Limnology 68 (1):  pp. 37–45. http://www.jlimnol.it/JL_68_1/04_leoni.pdf. 
  9. J. H Pantel, T. E Juenger & M. A. Leibold (2011). «Environmental gradients structure Daphnia pulex × pulicaria clonal distribution». Journal of Evolutionary Biology 24 (4):  pp. 723–732. doi:10.1111/j.1420-9101.2010.02196.x. 
  10. Winfried Lampert & Ulrich Sommer (2007). «Predation». Limnoecology: The Ecology of Lakes and Streams (2nd edición). Oxford University Press. pp. 162–179. ISBN 978-0-19-921393-1. 
  11. R. Tollrian (1993). «Neckteeth formation in Daphnia pulex as an example of continuous phenotypic plasticity: morphological effects of Chaoborus kairomone concentration and their quantification». Journal of Plankton Research 15 (11):  pp. 1309–1318. doi:10.1093/plankt/15.11.1309. 
  12. Robert Warner Sterner & James J. Elser (2002). Ecological Stoichiometry: the Biology of Elements from Molecules to the Biosphere. Princeton University Press. ISBN 978-0-691-07491-7. 
  13. Spencer R. Hall, Mathew A. Leibold, David A. Lytle & Val H. Smith (2004). «Stoichiometry and planktonic grazer composition over gradients of light, nutrients, and predation risk». Ecology 85 (8):  pp. 2291–2301. doi:10.1890/03-0471. 
  14. «Daphnia pulex v1.0». DOE Joint Genome Institute. Consultado el 29-11-2009.
  15. Florian Odronitz, Sebastian Becker & Martin Kollmar (2009). «Reconstructing the phylogeny of 21 completely sequenced arthropod species based on their motor proteins». BMC Genomics 10:  pp. 173. doi:10.1186/1471-2164-10-173. PMID 19383156. PMC 2674883. http://www.biomedcentral.com/1471-2164/10/173. 
  16. a b c d e John K. Colbourne, Michael E. Pfrender, Donald Gilbert et al. (2011). «The ecoresponsive genome of Daphnia pulex». Science 331 (6017):  pp. 555–561. doi:10.1126/science.1197761. PMID 21292972. Bibcode2011Sci...331..555C.